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常用生化試劑
10×DNA電泳上樣緩沖液-10ml
基本售價(jià)：60.00元
【保存條件】2-8℃存儲(chǔ)，有效期1年【概述】本產(chǎn)品是10倍濃縮的DNA上樣緩沖液，用于DNA凝膠電泳，能促使DNA樣品沉入凝膠加樣孔中。其主要成份為甘油，EDTA，溴酚藍(lán)和二甲苯青等。溴酚藍(lán)和二甲苯青用作電泳時(shí)的指示劑，可指示電泳進(jìn)程?！臼褂媒ㄗh】1. 請(qǐng)按9微升DNA樣品加入1微升10×DNA Loading Buffer上的比例(10倍稀釋)來(lái)使用。2. 混勻后，直接加到DNA凝膠加樣孔中，電泳?！咀⒁馐马?xiàng)】1. 若單次使用量較小，可分裝保存，避免污染。2. 為了您的安全與健康，請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作。3. 該試劑僅用于科研領(lǐng)域，不宜用于臨床診斷或其他用途。
高效Western封閉液
基本售價(jià)：240.00元
Western高效封閉液貨號(hào)規(guī)格GF1815500 ml/瓶u 產(chǎn)品簡(jiǎn)介在常規(guī)的Western blot和ELISA實(shí)驗(yàn)中，需要用封閉試劑將膜或酶標(biāo)板孔中的未被抗原或抗體占據(jù)的位點(diǎn)進(jìn)行封閉，通常的封閉試劑有BSA，脫脂奶粉等，但是BSA中有少量的抗體殘留，導(dǎo)致抗原/抗體之間的交叉反應(yīng)，從而產(chǎn)生高背景，雜帶多，或本底水平增高等影響。同樣脫脂奶粉中含有少量的生物素和堿性磷酸酶殘留，在使用生物素-親和素系統(tǒng)和堿性磷酸酶標(biāo)記的二抗時(shí)，也會(huì)使得背景高或本底水平增高，脫脂奶粉中含有的酪蛋白和堿性磷酸酶殘留也使得其不適用于磷酸化蛋白的檢測(cè)。本產(chǎn)品采用化學(xué)合成的高分子聚合物作為核心封閉試劑，能夠避免BSA、脫脂奶粉等動(dòng)物源性蛋白作為封閉試劑的缺陷，提高實(shí)驗(yàn)結(jié)果的精確性，增加條帶清晰度；本封閉液不會(huì)干擾辣根過(guò)氧化物酶(HRP)、堿性磷酸酶(AP)標(biāo)記二抗的檢測(cè)，同時(shí)也不影響基于生物素的檢測(cè)；本封閉劑不與蛋白產(chǎn)生非特異性結(jié)合，只封閉膜而不會(huì)屏蔽樣品蛋白的抗體識(shí)別位點(diǎn)，提高了抗體檢測(cè)靈敏度。封閉時(shí)間僅需十分鐘，大大縮短了實(shí)驗(yàn)過(guò)程，節(jié)省了寶貴實(shí)驗(yàn)時(shí)間。u 產(chǎn)品特色：? 即用型封閉液，可直接使用，4℃保質(zhì)兩年；? 封閉時(shí)間短，僅需10分鐘；? 減少高背景和非特異性免疫反應(yīng)，增強(qiáng)條帶清晰度；? 適合磷酸化特異抗體及生物素檢測(cè)系統(tǒng)；? 不含磷酸鹽、疊氮鈉或硫柳汞類(lèi)有毒防腐劑。u 運(yùn)輸和保存條件：常溫運(yùn)輸，4℃存儲(chǔ)，有效期兩年。u 操作步驟：1、 完成轉(zhuǎn)膜后，將膜移入到平皿或者其他適合的容器中。2、 根據(jù)膜的大小，在平皿或者其它適當(dāng)容器中倒入一定體積的封閉液，確保封閉液能充分覆蓋膜即可。3、 置于水平搖床上，室溫條件下振蕩孵育10分鐘左右。4、 封閉后的膜即可用于一抗孵育等后續(xù)Western Blot實(shí)驗(yàn)。u 注意事項(xiàng)? 通常用于PVDF膜或NC膜的封閉時(shí)間為10分鐘。對(duì)于背景低的抗體，可以縮短到5分鐘，而對(duì)于一些背景非常高的抗體，可以嘗試將封閉時(shí)間延長(zhǎng)為30-60分鐘。? 信號(hào)弱或無(wú)信號(hào)：可能是上樣量不足，轉(zhuǎn)膜效率低，抗體效價(jià)低、特異性差等原因造成；背景過(guò)高：可能是抗體使用量過(guò)多，試劑或儀器設(shè)備被污染等原因造成。? 由于沒(méi)有任何一種封閉液是適用于所有實(shí)驗(yàn)體系的，因此對(duì)于一些特殊的實(shí)驗(yàn)或抗體，請(qǐng)根據(jù)抗體說(shuō)明書(shū)及實(shí)驗(yàn)具體情況，選用合適類(lèi)型的封閉液。? 本產(chǎn)品不含疊氮鈉、硫柳汞類(lèi)防腐劑，但含安全性更高的醫(yī)療類(lèi)防腐劑，使用時(shí)還需小心操作避免皮膚直接接觸。
通用型抗體稀釋液
基本售價(jià)：790.00元
產(chǎn)品介紹：通用型抗體稀釋液是一種即用型的，適合于稀釋所有免疫抗體測(cè)定（Immunofluorescence, IHC, ELISA, WB）實(shí)驗(yàn)中的抗體。該試劑可用于一抗或二抗的稀釋和配制，在4℃保存和使用不少于六個(gè)月。稀釋液中加入了多種抗體結(jié)合反應(yīng)增強(qiáng)劑及穩(wěn)定劑，能夠增加抗體的溶解度和穩(wěn)定性，增強(qiáng)免疫反應(yīng)，降低非特異的背景顏色，提高實(shí)驗(yàn)的特異性和靈敏度?？煞磸?fù)使用，節(jié)約寶貴的抗體。試劑中不含有動(dòng)物源的蛋白、磷酸鹽、疊氮鈉或硫柳汞類(lèi)防腐劑，適合于所有類(lèi)型抗體稀釋?zhuān)℉RP，AP標(biāo)記的抗體。產(chǎn)品特色：1.即用型稀釋液，無(wú)需配制2.稀釋后的抗體可以使用長(zhǎng)達(dá)6個(gè)月3.適用所有實(shí)驗(yàn)的抗體稀釋?zhuān)↖F、IHC、ELISA、WB）4.含抗體結(jié)合反應(yīng)增強(qiáng)劑、穩(wěn)定劑，效果更佳5.不含 BSA、脫脂奶粉等動(dòng)物源蛋白6.不含磷酸鹽、疊氮鈉或硫柳汞類(lèi)防腐劑 運(yùn)輸和保存條件：常溫運(yùn)輸，4℃存儲(chǔ)，有效期兩年。使用說(shuō)明：1.根據(jù)抗體使用說(shuō)明書(shū)，直接用本品對(duì)一抗或二抗進(jìn)行適當(dāng)倍數(shù)的稀釋。2.保存在抗體稀釋液中的抗體可回收于4℃保存，可反復(fù)使用多次，長(zhǎng)達(dá)6 個(gè)月以上，直至不能達(dá)到理想結(jié)果后丟棄。注意事項(xiàng)：1.使用后請(qǐng)旋緊瓶蓋，防止溶液揮發(fā)或與空氣的物質(zhì)發(fā)生化學(xué)反應(yīng)，并放回4℃保存。2.在進(jìn)行抗體免疫反應(yīng)前可以使用Genefist的無(wú)蛋白封閉液（貨號(hào)GF1813）進(jìn)行封閉，能進(jìn)一步提高條帶的清晰度，減少顯色后的高背景和雜帶的產(chǎn)生 。3.本品不含疊氮鈉或硫柳汞類(lèi)防腐劑，但含安全性更高的防腐劑，還需小心操作避免皮膚直接接觸。4. 本試劑只能用于科研實(shí)驗(yàn)，請(qǐng)勿用于臨床診斷和其它用途。
5X蛋白上樣緩沖液（還原型）
基本售價(jià)：50.00元
產(chǎn)品簡(jiǎn)介： SDS-PAGE 上樣緩沖液(SDS-PAGE Loading Buffer, 5X)，是一種經(jīng)過(guò)改良的以溴酚藍(lán)為染料，5 倍濃縮的蛋白上樣緩沖液，用于 SDS-PAGE 時(shí)蛋白樣品的上樣操作。本產(chǎn)品不含傳統(tǒng)的 β-巰基乙醇或 DTT，采用 TCEP作為還原劑，穩(wěn)定性更好、還原效果更高，并且無(wú)難聞氣味！由于含有變性劑，本產(chǎn)品不適用于非變性膠的電泳。 保存條件： -20℃保存，至少兩年有效。 使用說(shuō)明： 1、 在 37℃水浴中溶解蛋白上樣緩沖液。 注意： Loading buffer 里含有大量甘油，有助于樣品沉淀至加樣孔底部，低溫下試劑組分在甘油里容易析出，使用前一定要確保蛋白上樣緩沖液充分溶解。 2、 按照每 4ul 蛋白樣品加入 1ul 上樣緩沖液的比例，混合蛋白樣品和上樣緩沖液。 3、 100℃或沸水浴加熱 5-10 分鐘，以充分變性蛋白。 注意：如果起始時(shí)細(xì)胞或組織的用量較大，基因組 DNA 含量較高，煮沸 5-10 分鐘后有可能仍然比較粘稠或者有粘稠狀的半透明物體，此時(shí)需要延長(zhǎng)煮沸時(shí)間，或者加入適量稀釋成 1X 的蛋白上樣緩沖液再煮 3-5 分鐘。充分煮沸可以使結(jié)合在基因組 DNA 上的蛋白充分釋放，同時(shí)會(huì)導(dǎo)致基因組 DNA 的部分?jǐn)嗔眩瑥亩拐吵砀邢?，這樣就不會(huì)影響后續(xù)的上樣操作。 4、 冷卻到室溫后，離心取上清上樣到 SDS-PAGE 膠加樣孔內(nèi)，開(kāi)始電泳。 5、 通常電泳至藍(lán)色染料到達(dá)膠的底端處附近，即可停止電泳。 注意事項(xiàng)： ? 由于含有變性劑，本品不適用于非變性膠的電泳 ? SDS-PAGE 蛋白上樣緩沖液(5X)必須完全溶解后再使用。 ? 本產(chǎn)品僅限于專(zhuān)業(yè)人員的科學(xué)研究用，不得用于臨床診斷或治療。 ? 為了您的安全和健康，請(qǐng)穿實(shí)驗(yàn)服并戴一次性手套操作。
RNAstore樣本保存液
基本售價(jià)：1296.00元
儲(chǔ)存條件 室溫（15-25℃）可穩(wěn)定保存1年以上。低溫貯存可能會(huì)產(chǎn)生沉淀或晶體析出，用之前需37℃完全溶解沉淀。 產(chǎn)品介紹 RNAstore是一種液態(tài)的、無(wú)毒的組織保存試劑。它能迅速滲入組織細(xì)胞中，通過(guò)抑制RNase活性從而保護(hù)非冷凍細(xì)胞RNA于原位，使其更適合于組織基因表達(dá)譜的分析。獲得組織塊后，迅速浸泡在RNAstore中保存，而不會(huì)引起RNA的降解，這樣可以不必馬上處理樣本，也不必將樣本冷凍在液氮之中。RNAstore可廣泛應(yīng)用于多種脊椎動(dòng)物樣本。包括腦、心、腎、脾、肝、肺和胸腺。 推薦不同組織樣品的RNAstore使用量： 注意事項(xiàng) 1.RNAstore只能用于新鮮組織，在浸入RNAstore之前不能冷凍組織。 2.要求組織樣本任何一邊的最大厚度不能大于0.5 cm, 然后將組織塊放入到10倍體積的RNAstore中保存。如果組織樣品厚度過(guò)大，RNAstore滲入組織樣本中的速度將會(huì)減慢造成RNA降解。所以如果厚度超過(guò)0.5 cm需簡(jiǎn)單切碎組織后再在RNAstore中貯存。 操作步驟 1.切割組織前估計(jì)加入RNAstore中的組織重量，并根據(jù)加入至少10倍體積組織的量確定RNAstore的使用量（舉例：組織100 mg需1 ml RNAstore） 2.切割組織后放入RNAstore中。如果組織樣本過(guò)大需剪切成任何一邊的最大厚度不能大于0.5 cm。 注意：為完全有效的保護(hù)組織樣本，該組織樣本應(yīng)完全浸沒(méi)入RNAstore中并且組織樣本的任何一邊的最大厚度不應(yīng)超過(guò)0.5 cm。 3.貯存于RNAstore中的樣品組織4℃可至少保存1個(gè)月、室溫1周和37℃ 1天。對(duì)于-20℃或-80℃長(zhǎng)期保存，先將樣本在4℃條件下過(guò)夜?jié)B透，然后將組織從RNAstore中取出后放入-20℃或-80℃長(zhǎng)期保存。樣本可隨后在室溫下解凍及再凍存，其RNA的質(zhì)和量都不會(huì)受影響。 注意：建議組織樣品在RNAstore中低溫保存 (4℃可至少保存1個(gè)月，-20℃或-80℃長(zhǎng)期保存)，不建議37℃或室溫保存。凍存于-20℃或-80℃的組織可反復(fù)凍融至少20次不影響RNA提取。保存于RNAstore中的組織如果需要長(zhǎng)途運(yùn)輸，運(yùn)輸過(guò)程中需要確保組織完全浸入RNAstore中。 4.從RNAstore中取出樣品就可以用RNA提取的試劑盒 (Trizol,RNAprepPure, RNAsimple)直接提取RNA。 其它應(yīng)用 1.該試劑不適合于保存植物葉片，其表面的臘表皮使RNAstore很難完全滲入組織中。 2.對(duì)于組織培養(yǎng)細(xì)胞的操作，先沉淀細(xì)胞，用PBS洗一次，再用少量的PBS懸浮細(xì)胞，后加2倍體積的RNAstore保存。后續(xù)RNA的提取可以采用直接離心去除RNAstore后進(jìn)行RNA提取，也可以不用去除RNAstore直接加入RNA提取裂解液進(jìn)行直接提取。 離心法：因?yàn)镽NAstore的介質(zhì)濃度比典型的細(xì)胞培養(yǎng)介質(zhì)的濃度高，因此用通常沉淀活細(xì)胞的離心力無(wú)法沉淀RNAstore中的細(xì)胞。離心沉淀細(xì)胞，去除RNAstore。（HeLa細(xì)胞大約需要3000×g，但其他細(xì)胞可能不能容忍這個(gè)速度，或者他們需要更大的離心力。） 直接提取法：通過(guò)向細(xì)胞混合物中加入10倍體積的RNA提取試劑來(lái)完成。 3.對(duì)于細(xì)菌的操作，先離心收集細(xì)菌，用PBS洗一次，再用少量的PBS懸浮細(xì)胞，加入2倍體積的RNAstore保存。后續(xù)RNA的提取參照組織細(xì)胞的提取步驟。大腸桿菌保存在RNAstore中4℃條件下1個(gè)月仍很完整，產(chǎn)生不降解的RNA。 4.對(duì)于全血中白細(xì)胞的保存，需將白細(xì)胞從紅細(xì)胞和血清中分離出來(lái)，并按組織培養(yǎng)細(xì)胞一樣處理后，白細(xì)胞便能有效地保存在RNAstore中。不要將全血、血漿或血清中的RNA保存在RNAstore中，因?yàn)樗鼈兊鞍缀窟^(guò)高，與RNAstore混合后易形成不溶的沉淀。
多糖多酚植物總RNA提取試劑盒
基本售價(jià)：1184.00元
儲(chǔ)存條件 “裂解液RS” 和 “DNase I”，儲(chǔ)存于-20℃；其他試劑室溫（15-25℃）保存。 產(chǎn)品簡(jiǎn)介 本試劑盒所含“裂解液 RS”，采用我司獨(dú)特的“SDS/抗氧化”的方式，可適用于廣泛的植物組織，包含草本植物與本本植物的葉片、具高粘性的多糖多酚類(lèi)及種子胚乳的植物樣本；此提取方案，增加了額外步驟去除多酚和多糖，RNA 的提取總量更高。提取的總 RNA 純度高，基本沒(méi)有基因組、蛋白和其它雜質(zhì)的污染，可用于 PCR、Blot、分子克隆等多種下游實(shí)驗(yàn)。 預(yù)防RNase污染，應(yīng)注意以下幾方面 1.經(jīng)常更換新手套，因?yàn)槠つw帶有細(xì)菌，可能導(dǎo)致RNase污染;使用無(wú)RNase的塑料制品和槍頭避免交叉污染。 2.RNA在裂解液RL中時(shí)不會(huì)被RNase降解。但提取后繼續(xù)處理過(guò)程中應(yīng)使用不含RNase的塑料和玻璃器皿。玻璃器皿可在150℃烘烤4h，塑料器皿可在0.5M NaOH中浸泡10min，然后用水清洗再滅菌，即可去除RNase。 3.配制溶液應(yīng)使用無(wú)RNase的水（將水加入到干凈的玻璃瓶中，加入DEPC至終濃度0.1%(V/V)，高壓滅菌）。 使用前注意事項(xiàng) 1.裂解液 RS：使用前請(qǐng)于 50℃水浴將裂解液完全回溶，并添加 450ul 巰基乙醇；添加過(guò)巰基乙醇的裂解液 RS 繼續(xù)保存于-20℃（建議將添加過(guò)巰基乙醇的裂解液 RS 于無(wú)酶管分裝成小量，再保存于-20℃）。 2.溶液 BC：使用前請(qǐng)?zhí)砑?30ml 無(wú)水乙醇。 3.漂洗液 PW：使用前請(qǐng)?zhí)砑?64ml 無(wú)水乙醇。 4.為確保 RNA 的品質(zhì)及產(chǎn)量，應(yīng)盡量收取新鮮的動(dòng)物組織進(jìn)行 RNA 提取，或?qū)⒔M織立即以液氮冷凍，儲(chǔ)存于-70℃，組織亦可保存在 RANstore 樣本保存液（目錄號(hào)：TR38）中。 5.鳳梨和蘭花推薦采用“裂解液 RL”（kit 產(chǎn)品目錄 TR02） 操作步驟 1.勻漿處理：50-100 mg 植物葉片在液氮中迅速研磨成粉末，加入 450 μl 裂解液 RS（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入 β-巰基乙醇），立即渦旋劇烈震蕩混勻，并于 56℃孵育 5-10 分鐘，每隔一段時(shí)間可翻轉(zhuǎn)混合離心管。 注意：由于植物多樣性非常豐富，而且同種植物的不同生長(zhǎng)發(fā)育階段和不同組織的 RNA 含量都不相同，請(qǐng)根據(jù)具體實(shí)驗(yàn)情況選擇合適的植物材料的用量。 2.加入 150ul 的溶液 GP 至裂解液中，混合均勻，于冰上孵育 5 分鐘，12,000rpm(~13,400×g)離心 5 min。 注意：溶液會(huì)呈現(xiàn)霧狀，為界面活性劑、蛋白質(zhì)、多糖及二次代謝物的沉淀物。 3.移取上清液至過(guò)濾柱 CS1 上(過(guò)濾柱 CS1 放在收集管中)，12,000 rpm(~13,400×g)離心 2 min。 4.小心吸取收集管中的上清至新的 RNase-Free 離心管中，吸頭盡量避免接觸收集管中的細(xì)胞碎片沉淀。 5.向溶液中加入 1.5 倍體積的溶液 BC（已添加無(wú)水乙醇）,以震蕩或移液器吸吐混合均勻。 注意：加入溶液 BC 后會(huì)形成絲狀沉淀物，不影響 RNA 提取。 6.移取混合液（連同沉淀物一起）至吸附柱 CR1（吸附柱 CR1 放在收集管中），12,000 rpm(~13,400×g) 離心1 min，丟棄濾液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。 注意：如果混合液體積大于吸附柱容量，可以分次完成。 7.向吸附柱 CR1 中加入 500ul 溶液 RW，12,000rpm(~13,400×g)離心 1min，丟棄濾液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。 8.DNase Ⅰ降解。 每一純化反應(yīng)，請(qǐng)將 80 ul DNase 消化液與 10ul DNaseⅠ預(yù)先混合在新的離心管(輕彈或翻轉(zhuǎn)離心管以混合均勻，請(qǐng)勿震蕩)，將 90 ul “DNaseⅠ工作液”加入至吸附柱的膜中心，于室溫（25~28℃）孵育 15 分鐘。 注意：如同時(shí)操作多組樣本，請(qǐng)使用前現(xiàn)配新鮮的 DNaseⅠ工作液,請(qǐng)勿預(yù)先配制保存 DNaseⅠ工作液。 9.向吸附柱 CR1 中加入 500μl 溶液 RW，12,000 rpm(~13,400×g)離心 1 min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱CR1 放回收集管中。 10.向吸附柱 CR1 中加入 600 μl 漂洗液 PW（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入乙醇），12,000 rpm(~13,400×g) 離心 1 min，丟棄濾液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。 11.重復(fù)操作步驟 10。 12.12,000rpm(~13,400×g)離心 3 min，將吸附柱 CR1 置于室溫放置數(shù)分鐘，以徹底晾干吸附柱中殘余的乙醇。 注意：此步驟目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，離心后將吸附柱 CR1 在室溫放置片刻，以充分晾干。如果有漂洗液殘留，可能會(huì)影響后續(xù)的 RT 等實(shí)驗(yàn)。 13.將吸附柱 CR1 轉(zhuǎn)入一個(gè)新的 RNase-Free 離心管中，加入 30-100 μl 無(wú)酶雙蒸水至吸附柱的膜中心，室溫靜置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g)離心 1 min，得到 RNA 溶液。 注意：洗脫液體積不應(yīng)少于 30μl，體積過(guò)小影響回收效率。為了增加產(chǎn)量，可將步驟 13 得到的 RNA 溶液再加入吸附柱 CR1，放置2min，12,000rpm(~13,400×g)離心 1min，得到 RNA 溶液。RNA 溶液-70℃中保存。 附錄：從高度黏稠性的富含多酚及多糖成分的樣本中提取 RNA 樟科植物樣本，在裂解后粘稠度高、移取困難，可直接于過(guò)濾柱中進(jìn)行裂解，以減少移液器吸取的步驟。 1.將過(guò)濾柱 CS1 于冰上預(yù)冷，秤取不超過(guò) 30mg 的樣本組織，于液氮中迅速研磨，并將研磨的樣本直接轉(zhuǎn)移至預(yù)冷的過(guò)濾柱 CS1 里（過(guò)濾柱 CS1 放在收集管中）。 2.加入 600ul 裂解液 RS(已添加巰基乙醇)至過(guò)濾柱，于 60℃金屬浴孵育 10 分鐘。 3.12,000 rpm(~13,400×g)離心 5 min，將收集管中的濾液移取至新的 1.5ml 離心管，請(qǐng)避免吸取到沉淀物。 注意：有些樣本可能會(huì)堵塞過(guò)濾柱，可再次離心，或?qū)⒐苤惺Ｓ嗟牧呀庖阂浦列碌倪^(guò)濾柱 CS1 再次離心。 4.加入 1/3 倍體積的溶液 GP 至濾液中，混合均勻，于冰上孵育 5 分鐘，12,000 rpm(~13,400×g)離心離心 5min，將上清液小心轉(zhuǎn)移至新的 1.5ml 離心管，不要觸碰或移取固體沉淀。轉(zhuǎn)至上面“操作步驟 5”。
動(dòng)物組織總RNA提取試劑盒
基本售價(jià)：1104.00元
儲(chǔ)存條件 “DNase I（DNase I 凍干粉溶解于專(zhuān)用保存液）”，儲(chǔ)存于-20℃； 其他試劑室溫（15-25℃）保存。 產(chǎn)品簡(jiǎn)介 動(dòng)物組織總RNA提取試劑盒提供了快速簡(jiǎn)單且有效的方法，可從各種動(dòng)物組織中提取總RNA。本試劑盒采用離心管柱的方式，配合使用我司獨(dú)特的硫氰酸胍裂解液，使組織裂解及均質(zhì)化，并加入乙醇使RNA選擇性的與管柱膜結(jié)合，于操作過(guò)程中加入DNase Ⅰ以去除殘留的基因組DNA，經(jīng)過(guò)多次“洗滌及離心”的步驟去除污染雜質(zhì)，再以無(wú)核酸酶水回收結(jié)合在管柱膜上的RNA。若RNA小于200nt,如5sRNA、tRNA和microRNA,無(wú)法在此系統(tǒng)中被有效地回收。提取的總RNA純度高，基本沒(méi)有DNA和蛋白質(zhì)污染，可用于PCR、芯片分析、Blot、PolyA 篩選、體外翻譯、RNase 保護(hù)分析和分子克隆等多種下游實(shí)驗(yàn)。 預(yù)防RNase污染，應(yīng)注意以下幾方面 1.經(jīng)常更換新手套，因?yàn)槠つw經(jīng)常帶有細(xì)菌，可能導(dǎo)致RNase污染。 2.使用無(wú)RNase的塑料制品和槍頭避免交叉污染。 3.RNA在裂解液RL中時(shí)不會(huì)被RNase降解。但提取后繼續(xù)處理過(guò)程中應(yīng)使用不含RNase的塑料和玻璃器皿。玻璃器皿可在150℃烘烤4 h，塑料器皿可在0.5 M NaOH中浸泡10 min，然后用水徹底清洗，再滅菌，即可去除RNase。 4.配制溶液應(yīng)使用無(wú)RNase的水（將水加入到干凈的玻璃瓶中，加入DEPC至終濃度0.1%(V/V)，高壓滅菌）。 使用前注意事項(xiàng) 1.裂解液 RL：使用前請(qǐng)?zhí)砑?300ul 巰基乙醇，添加過(guò)巰基乙醇的裂解液 4℃保存。 2.漂洗液 PW：使用前請(qǐng)?zhí)砑?64ml 無(wú)水乙醇。 3.為確保 RNA 的品質(zhì)及產(chǎn)量，應(yīng)盡量收取新鮮的動(dòng)物組織進(jìn)行 RNA 提取，或?qū)⒔M織立即以液氮冷凍，儲(chǔ)存于-70℃，組織亦可保存在 RANstore 樣本保存液（目錄號(hào)：TR38）中。樣本保存在 RNAstore 試劑中，可于37℃存放 1 天、4℃存放 1 個(gè)月、-20℃永久保存，所提取的 RNA 品質(zhì)與儲(chǔ)存在液氮中相同。 操作步驟 1.勻漿處理： 每 10-20 mg 組織加 300 μl 裂解液 RL（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入 β-巰基乙醇），用研磨杵將組織徹底研磨（如組織較難徹底研磨，可選用電動(dòng)或玻璃勻漿器）；隨后向勻漿液 中加入 590 μl RNase-Free ddH2O 和10 μl Proteinase K，混勻后 56℃處理 10-20 min。 注意：組織量一定不要超過(guò) 20 mg，否則將導(dǎo)致 RNA 得率和質(zhì)量下降。 2.將裂解混合液轉(zhuǎn)移至過(guò)濾柱 CS1(過(guò)濾柱 CS1 放入收集管中)，12,000 rpm(~13,400×g)離心 2min，收集濾液。 3.向?yàn)V液加入 0.5 倍上清體積的無(wú)水乙醇，均勻（此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)沉淀）。 4.將所得“裂解液/乙醇混合液”（含沉淀），移取至吸附柱 CR1 中（吸附柱 CR1 放入收集管中），12,000 rpm(~13,400×g )離心 30-60 sec，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。 注意：將溶液和沉淀轉(zhuǎn)移至吸附柱 CR1 時(shí)，如果體積大于吸附柱容量，可以分次完成。 5.向吸附柱 CR1 中加入 500ul 溶液 RW，12,000 rpm (~13,400×g )離心離心 1 min，丟棄濾液，將吸附柱CR1 放回收集管中。 6.DNase Ⅰ降解。 每一純化反應(yīng)，請(qǐng)將 80 ul DNase 消化液與 10ul DNaseⅠ預(yù)先混合在新的離心管(輕彈或翻轉(zhuǎn)離心管以混合均勻，請(qǐng)勿震蕩)，將 90 ul “DNaseⅠ工作液”加入至吸附柱的膜中心，于室溫（25~28℃）孵育15 分鐘。 注意：如同時(shí)操作多組樣本，請(qǐng)使用前現(xiàn)配新鮮的 DNaseⅠ工作液,請(qǐng)勿預(yù)先配制保存 DNaseⅠ工作液。 7.向吸附柱 CR1 中加入 500μl 溶液 RW，12,000 rpm(~13,400×g)離心 1 min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。 8.向吸附柱 CR1 中加入 600μl 漂洗液 PW（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入乙醇），12,000 rpm(~13,400×g) 離心 1 min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。 9.重復(fù)操作步驟 8。 10.12,000 rpm(~13,400×g)離心 3 min，將吸附柱 CR1 置于室溫放置數(shù)分鐘，以徹底晾干吸附材料中殘余的乙醇。 注意：此步驟目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，離心后將吸附柱 CR1 在室溫放置片刻，以充分晾干。如果有漂洗液殘留，可能會(huì)影響后續(xù)的 RT 等實(shí)驗(yàn)。 11.將吸附柱 CR1 轉(zhuǎn)入一個(gè)新的 RNase-Free 離心管中，加入 30-100 μl 無(wú)酶雙蒸水至吸附柱的膜中心，室溫靜置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g)離心 1 min，得到 RNA 溶液。 注意：洗脫緩沖液體積不應(yīng)少于 30 μl，體積過(guò)小影響回收效率；RNA 溶液請(qǐng)于-70℃保存。
培養(yǎng)細(xì)胞/細(xì)菌總RNA提取試劑盒
基本售價(jià)：1024.00元
選配的試劑溶菌酶（50mg/ml）目錄號(hào)：GF0203-01，客戶自備，提取細(xì)菌總 RNA 時(shí)需配備儲(chǔ)存條件DNase I（為DNase I 凍干粉溶解于專(zhuān)用保存液），儲(chǔ)存于-20℃；其他試劑室溫（15-25℃）保存。產(chǎn)品簡(jiǎn)介培養(yǎng)細(xì)胞/細(xì)菌總RNA提取試劑盒，提供了快速簡(jiǎn)單且有效的方法，可從培養(yǎng)細(xì)胞和細(xì)菌中提取總RNA。本試劑盒采用離心管柱的方式，配合使用我司獨(dú)特的硫氰酸胍裂解液，使細(xì)胞或細(xì)菌裂解及均質(zhì)化，并加入乙醇使RNA選擇性的與管柱膜結(jié)合，于操作過(guò)程中加入DNase Ⅰ以去除殘留的基因組DNA，經(jīng)過(guò)多次“洗滌及離心”的步驟去除污染雜質(zhì)，再以無(wú)核酸酶水回收結(jié)合在管柱膜上的RNA。若RNA小于200nt,如5sRNA、tRNA和microRNA,無(wú)法在此系統(tǒng)中被有效地回收。提取的總RNA純度高，基本沒(méi)有DNA和蛋白質(zhì)污染，可用于PCR、芯片分析、Blot、PolyA 篩選、體外翻譯、RNase 保護(hù)分析和分子克隆等多種下游實(shí)驗(yàn)。預(yù)防RNase污染，應(yīng)注意以下幾方面1.經(jīng)常更換新手套，因?yàn)槠つw經(jīng)常帶有細(xì)菌，可能導(dǎo)致RNase污染。2.使用無(wú)RNase的塑料制品和槍頭避免交叉污染。3.RNA在裂解液RL中時(shí)不會(huì)被RNase降解。但提取后繼續(xù)處理過(guò)程中應(yīng)使用不含RNase的塑料和玻璃器皿。玻璃器皿可在150℃烘烤4 h，塑料器皿可在0.5 M NaOH中浸泡10 min，然后用水徹底清洗，再滅菌，即可去除RNase。4.配制溶液應(yīng)使用無(wú)RNase的水（將水加入到干凈的玻璃瓶中，加入DEPC至終濃度0.1%(V/V)，高壓滅菌）。使用前注意事項(xiàng)1.裂解液 RL：使用前請(qǐng)?zhí)砑?300ul 巰基乙醇，添加過(guò)巰基乙醇的裂解液 4℃保存。2.漂洗液 PW：使用前請(qǐng)?zhí)砑?64ml 無(wú)水乙醇。3.為確保 RNA 的品質(zhì)及產(chǎn)量，應(yīng)盡量收取新鮮的動(dòng)物組織進(jìn)行 RNA 提取，或?qū)⒔M織立即以液氮冷凍，儲(chǔ)存于-70℃，組織亦可保存在 RANstore 樣本保存液（目錄號(hào)：TR38）中。樣本保存在 RNAstore 試劑中，可于37℃存放 1 天、4℃存放 1 個(gè)月、-20℃永久保存，所提取的 RNA 品質(zhì)與儲(chǔ)存在液氮中相同。操作步驟一、從培養(yǎng)細(xì)胞中提取總 RNA1.收集細(xì)胞a.懸浮細(xì)胞的收集（收集細(xì)胞數(shù)量請(qǐng)不要超過(guò) 1×107）：估計(jì)細(xì)胞數(shù)量，300×g 離心 5 min，將細(xì)胞收集到離心管中，仔細(xì)吸除所有培養(yǎng)基上清。b.單層貼壁細(xì)胞的收集（收集細(xì)胞數(shù)量請(qǐng)不要超過(guò) 1×107）：可直接在培養(yǎng)容器中裂解（容器直徑不超過(guò)10 cm），或者使用胰蛋白酶處理后離心收集細(xì)胞沉淀。（在搖瓶中培養(yǎng)的單層貼壁細(xì)胞通常采用胰蛋白酶處理的方法。）直接裂解法：確定細(xì)胞數(shù)量，徹底吸除細(xì)胞培養(yǎng)基上清，立即進(jìn)行第 2 步裂解步驟。胰蛋白酶處理法：確定細(xì)胞數(shù)量，吸除培養(yǎng)基，用 PBS 洗滌細(xì)胞，吸除 PBS，向細(xì)胞中加入含有0.10-0.25%胰蛋白酶的 PBS 處理細(xì)胞，當(dāng)細(xì)胞脫離容器壁時(shí)，加入含有血清的培養(yǎng)基失活胰蛋白酶，將細(xì)胞溶液轉(zhuǎn)移至 RNase-Free 的離心管中，300×g 離心 5 min，收集細(xì)胞沉淀，仔細(xì)吸除所有上清。注意：收集細(xì)胞時(shí)一定要將細(xì)胞培養(yǎng)液去除干凈，否則會(huì)導(dǎo)致裂解不完全，影響 RNA 與吸附柱的結(jié)合，造成 RNA 的產(chǎn)量降低;請(qǐng)勿使用過(guò)多的樣本量，避免管柱杜塞而造成 RNA 的產(chǎn)量降低。2.裂解處理a.對(duì)于離心得到的細(xì)胞沉淀：輕彈離心管底部，使細(xì)胞沉淀松散，加入適量裂解液 RL（詳見(jiàn)下表，使用3.將所有溶液轉(zhuǎn)移至過(guò)濾柱 CS1 上(過(guò)濾柱 CS1 放在收集管中)，12,000 rpm(~13,400×g)離心 2min，收集濾液。4.向?yàn)V液加入等體積 70%乙醇至裂解液中，混勻（此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)沉淀）。5.將“裂解液/乙醇混合液”（含沉淀）移取至吸附柱 CR1 中（吸附柱 CR1 放入收集管中），12,000 rpm (~13,400×g )離心 30-60 sec，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。注意：將溶液和沉淀轉(zhuǎn)移至吸附柱 CR1 時(shí)，如果體積大于吸附柱容量，可以分次完成。6.向吸附柱 CR1 加入 500ul 溶液 RW，12,000 rpm (~13,400×g )離心離心 1 min，丟棄濾液。7.DNase Ⅰ降解。每一純化反應(yīng)，請(qǐng)將 80 ul DNase 消化液與 10ul DNaseⅠ預(yù)先混合在新的離心管(輕彈或翻轉(zhuǎn)離心管以混合均勻，請(qǐng)勿震蕩)，將 90 ul “DNaseⅠ工作液”加入至吸附柱的膜中心，于室溫（25~28℃）孵育15 分鐘。注意：如同時(shí)操作多組樣本，請(qǐng)使用前現(xiàn)配新鮮的 DNaseⅠ工作液,請(qǐng)勿預(yù)先配制保存 DNaseⅠ工作液。8.向吸附柱 CR1 中加入 500μl 溶液 RW，12,000 rpm(~13,400×g)離心 1 min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。9.向吸附柱 CR1 中加入 600μl 漂洗液 PW（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入乙醇），12,000 rpm(~13,400×g) 離心 1 min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。10.重復(fù)操作步驟 9。11.12,000 rpm(~13,400×g)離心 3 min，將吸附柱 CR1 置于室溫放置數(shù)分鐘，以徹底晾干吸附材料中殘余的乙醇。注意：此步驟目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，離心后將吸附柱 CR1 在室溫放置片刻，以充分晾干。如果有漂洗液殘留，可能會(huì)影響后續(xù)的 RT 等實(shí)驗(yàn)。12.將吸附柱 CR1 轉(zhuǎn)入一個(gè)新的 RNase-Free 離心管中，加入 30-100 μl 無(wú)酶雙蒸水至吸附柱的膜中心，室溫靜置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g)離心 1 min，得到 RNA 溶液。注意：洗脫緩沖液體積不應(yīng)少于 30 μl，體積過(guò)小影響回收效率；RNA 溶液請(qǐng)于-70℃保存。二、從細(xì)菌中提取總 RNA1.4℃12,000 rpm(~13,400×g)離心 2 min 收集菌體（收集菌體的最大量不超過(guò) 1×109），仔細(xì)去除所有培養(yǎng)基上清，以后的所有離心步驟均在室溫（20-25℃）進(jìn)行。注意：如果培養(yǎng)基上清去除不完全，將對(duì)第二步中的細(xì)胞壁消化過(guò)程產(chǎn)生抑制。2.用含有溶菌酶的 100μl TE 緩沖液（客戶自己配制，配制方法見(jiàn)下表）徹底重懸菌體，孵育時(shí)間見(jiàn)下表。3.加入 350μl 裂解液 RL（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入β-巰基乙醇），渦旋振蕩混勻。 4.將裂解混合液轉(zhuǎn)移至過(guò)濾柱 CS1 上(過(guò)濾柱 CS1 放入收集管)，12,000 rpm(~13,400×g)離心 2min，收集濾液。 5.向?yàn)V液中加入 250μl 無(wú)水乙醇，混勻（此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)沉淀）。 6.將“裂解液/乙醇混合液”（含沉淀）移取至吸附柱 CR1 中（吸附柱 CR1 放入收集管中），12,000 rpm (~13,400×g )離心 30-60 sec，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。 注意：將溶液和沉淀轉(zhuǎn)移至吸附柱 CR1 時(shí)，如果體積大于吸附柱容量，可以分次完成。 7.向吸附柱 CR1 中加入 500ul 溶液 RW，12,000 rpm (~13,400×g )離心離心 1 min，丟棄濾液，將吸附柱CR1 放回收集管中。 8.DNase Ⅰ降解。 每一純化反應(yīng)，請(qǐng)將 80 ul DNase 消化液與 10ul DNaseⅠ預(yù)先混合在新的離心管(輕彈或翻轉(zhuǎn)離心管以混合均勻，請(qǐng)勿震蕩)，將 90 ul “DNaseⅠ工作液”加入至吸附柱的膜中心，于室溫（25~28℃）孵育15 分鐘。 注意：如同時(shí)操作多組樣本，請(qǐng)使用前現(xiàn)配新鮮的 DNaseⅠ工作液,請(qǐng)勿預(yù)先配制保存 DNaseⅠ工作液。 9.向吸附柱 CR1 中加入 500μl 溶液 RW，12,000 rpm(~13,400×g)離心 1 min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。 10.向吸附柱 CR1 中加入 600μl 漂洗液 PW（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入乙醇），12,000 rpm(~13,400×g)離心 1 min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。 11.重復(fù)操作步驟 10。 12.12,000 rpm(~13,400×g)離心 3 min，將吸附柱 CR1 置于室溫放置數(shù)分鐘，以徹底晾干吸附材料中殘余的乙醇。 注意：此步驟目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，離心后將吸附柱 CR1 在室溫放置片刻，以充分晾干。如果有漂洗液殘留，可能會(huì)影響后續(xù)的 RT 等實(shí)驗(yàn)。 13.將吸附柱 CR1 轉(zhuǎn)入一個(gè)新的 RNase-Free 離心管中，加入 30-100 μl 無(wú)酶雙蒸水至吸附柱的膜中心，室溫靜置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g)離心 1 min，得到 RNA 溶液。 注意：洗脫緩沖液體積不應(yīng)少于 30 μl，體積過(guò)小影響回收效率；RNA 溶液請(qǐng)于-70℃保存。
植物總RNA提取試劑盒
基本售價(jià)：1184.00元
儲(chǔ)存條件 “裂解液RS” 和 “DNase I（DNase I 凍干粉溶解于專(zhuān)用保存液）”，儲(chǔ)存于-20℃。其他試劑室溫（15-25℃）保存。 產(chǎn)品簡(jiǎn)介 由于植物的細(xì)胞結(jié)構(gòu)和代謝活性在物種、組織類(lèi)型和發(fā)育階段之間可能存在顯著差異，因此沒(méi)有一種通用的裂解溶液或獨(dú)特的方法可以同樣適用于所有植物樣品。本試劑盒包含兩種可供選擇的裂解緩沖液系統(tǒng)：裂解緩沖液 RL（含硫氰酸胍）和裂解緩沖液 RS(含 SDS/抗氧化劑)，適用于各種植物和真菌樣品?！傲呀庖篟L”含硫氰酸胍，此提取方案適用于大部分的植物組織，操作簡(jiǎn)單快速，但它不適用于富含淀粉、多酚類(lèi)及多糖類(lèi)的樣本，因?yàn)榱呀庖篟L加入上述樣本后，會(huì)使樣本變非常粘稠甚至凝固。 “裂解液RS”，采用我司獨(dú)特的“SDS/抗氧化”的方式，可適用于廣泛的植物組織，包含草本植物與本本植物的葉片、具高粘性的多糖多酚類(lèi)及種子胚乳的植物樣本，此提取方案，增加了額外步驟去除多酚和多糖，RNA的提取總量更高。 本試劑盒提取的總 RNA 純度高，基本沒(méi)有基因組、蛋白和其它雜質(zhì)的污染，可用于 PCR、Blot、分子克隆等多種下游實(shí)驗(yàn)。 預(yù)防RNase污染，應(yīng)注意以下幾方面 1.經(jīng)常更換新手套，因?yàn)槠つw經(jīng)常帶有細(xì)菌，可能導(dǎo)致RNase污染。 2.使用無(wú)RNase的塑料制品和槍頭避免交叉污染。 3.RNA在裂解液RL中時(shí)不會(huì)被RNase降解。但提取后繼續(xù)處理過(guò)程中應(yīng)使用不含RNase的塑料和玻璃器皿。玻璃器皿可在150℃烘烤4 h，塑料器皿可在0.5 M NaOH中浸泡10 min，然后用水徹底清洗，再滅菌，即可去除RNase。 4.配制溶液應(yīng)使用無(wú)RNase的水（將水加入到干凈的玻璃瓶中，加入DEPC至終濃度0.1%(V/V)，高壓滅菌）。 使用前注意事項(xiàng) 1.裂解液 RL：使用前請(qǐng)?zhí)砑?300ul 巰基乙醇，添加過(guò)巰基乙醇的裂解液 4℃保存。 2.裂解液 RS：使用前請(qǐng)于 50℃水浴將裂解液完全回溶，并添加 450ul 巰基乙醇；添加過(guò)巰基乙醇的裂解液RS 繼續(xù)保存于-20℃（建議將添加過(guò)巰基乙醇的裂解液 RS 于無(wú)酶管分裝成小量，再保存于-20℃）。 3.溶液 BC：使用前請(qǐng)?zhí)砑?30ml 無(wú)水乙醇。 4.漂洗液 PW：使用前請(qǐng)向添加 64ml 無(wú)水乙醇。 5.為確保 RNA 的品質(zhì)及產(chǎn)量，應(yīng)盡量收取新鮮的動(dòng)物組織進(jìn)行 RNA 提取，或?qū)⒔M織立即以液氮冷凍，儲(chǔ)存于-70℃，組織亦可保存在 RANstore 樣本保存液（目錄號(hào)：TR38）中。 6.鳳梨和蘭花推薦采用“裂解液 RL”。 操作步驟 一、裂解液 RL 操作步驟： 1.勻漿處理 50-100 mg 植物葉片在液氮中迅速研磨成粉末，加入 450ul RL（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入 β-巰基乙醇），渦旋劇烈震蕩混勻，并于 56℃孵育 3 分鐘。 注意 1：在 56℃孵育 1-3 min 將有助于植物組織裂解，但是對(duì)于某些富含淀粉的樣品，請(qǐng)不要加熱處理，防止因淀粉引起的樣品膨脹現(xiàn)象。 注意 2：由于植物多樣性非常豐富，而且同種植物的不同生長(zhǎng)發(fā)育階段和不同組織的 RNA 含量都不相同，請(qǐng)根據(jù)具體實(shí)驗(yàn)情況選擇合適的植物材料的用量。 2.將所有溶液轉(zhuǎn)移至過(guò)濾柱 CS1 上(過(guò)濾柱 CS1 放在收集管中)，12,000 rpm(~13,400×g)離心 2-5 min，小心吸取收集管中的上清至 RNase-Free 的離心管中，吸頭盡量避免接觸收集管中的細(xì)胞碎片沉淀。 注意：由于裂解液較粘稠，所以將溶液轉(zhuǎn)移至過(guò)濾柱時(shí)，可以剪去部分吸頭末端。 3.緩慢加入 0.5 倍上清體積的無(wú)水乙醇，混勻（此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)沉淀），轉(zhuǎn)至“RNA 提取”步驟。 4.將所得“裂解液/乙醇混合液”（含沉淀），移取至吸附柱 CR1 中（吸附柱 CR1 放入收集管中），12,000 rpm(~13,400×g )離心 30-60 sec，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。 注意：將溶液和沉淀轉(zhuǎn)移至吸附柱 CR1 時(shí)，如果體積大于吸附柱容量，可以分次完成。 5.向吸附柱 CR1 中加入 500ul 溶液 RW，12,000 rpm (~13,400×g )離心離心 1 min，丟棄濾液,將吸附柱CR1 放回收集管中。 6.DNase Ⅰ降解。 每一純化反應(yīng)，請(qǐng)將 80 ul DNase 消化液與 10ul DNaseⅠ預(yù)先混合在新的離心管(輕彈或翻轉(zhuǎn)離心管以混合均勻，請(qǐng)勿震蕩)，將 90 ul “DNaseⅠ工作液”加入至吸附柱的膜中心，于室溫（25~28℃）孵育15 分鐘。 注意：如同時(shí)操作多組樣本，請(qǐng)使用前現(xiàn)配新鮮的 DNaseⅠ工作液,請(qǐng)勿預(yù)先配制保存 DNaseⅠ工作液。 7.向吸附柱 CR1 中加入 500μl 溶液 RW，12,000 rpm(~13,400×g)離心 1 min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。 8.向吸附柱 CR1 中加入 600μl 漂洗液 PW（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入乙醇），12,000 rpm(~13,400×g) 離心 1 min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。 9.重復(fù)操作步驟 8。 10.12,000 rpm(~13,400×g)離心 3 min，將吸附柱 CR1 置于室溫放置數(shù)分鐘，以徹底晾干吸附材料中殘余 的乙醇。 注意：此步驟目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，離心后將吸附柱 CR1 在室溫放置片刻，以充分晾干。如果有漂洗液殘留，可能會(huì)影響后續(xù)的 RT 等實(shí)驗(yàn)。 11.將吸附柱 CR1 轉(zhuǎn)入一個(gè)新的 RNase-Free 離心管中，加入 30-100 μl 無(wú)酶雙蒸水至吸附柱的膜中心，室溫靜置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g)離心 1 min，得到 RNA 溶液。 注意：洗脫緩沖液體積不應(yīng)少于 30 μl，體積過(guò)小影響回收效率；RNA 溶液請(qǐng)于-70℃保存。 二、裂解液 RS 操作步驟 1.勻漿處理：50-100 mg 植物葉片在液氮中迅速研磨成粉末，加入 450 μl 裂解液 RS（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入 β-巰基乙醇），立即渦旋劇烈震蕩混勻，并于 56℃孵育 5-10 分鐘，每隔一段時(shí)間可翻轉(zhuǎn)混合離心管。 注意：由于植物多樣性非常豐富，而且同種植物的不同生長(zhǎng)發(fā)育階段和不同組織的 RNA 含量都不相同，請(qǐng)根據(jù)具體實(shí)驗(yàn)情況選擇合適的植物材料的用量。 2.加入 150ul 的溶液 GP 至裂解液中，混合均勻，于冰上孵育 5 分鐘，12,000rpm(~13,400×g)離心 5 min。 注意：溶液會(huì)呈現(xiàn)霧狀，為界面活性劑、蛋白質(zhì)、多糖及二次代謝物的沉淀物。 3.移取上清液至過(guò)濾柱 CS1 上(過(guò)濾柱 CS1 放在收集管中)，12,000 rpm(~13,400×g)離心 2 min。 4.小心吸取收集管中的上清至新的 RNase-Free 離心管中，吸頭盡量避免接觸收集管中的細(xì)胞碎片沉淀。 5.向溶液中加入 1.5 倍體積的溶液 BC（已添加無(wú)水乙醇）,以震蕩或移液器吸吐混合均勻。 注意：加入溶液 BC 后會(huì)形成絲狀沉淀物，不影響 RNA 提取。 6.移取混合液（連同沉淀物一起）至吸附柱 CR1（吸附柱 CR1 放在收集管中），12,000 rpm(~13,400×g) 離心 1 min，丟棄濾液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。 注意：如果混合液體積大于吸附柱容量，可以分次完成。 7.向吸附柱 CR1 中加入 500ul 溶液 RW，12,000rpm(~13,400×g)離心 1min，丟棄濾液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。 8.DNase Ⅰ降解。 每一純化反應(yīng)，請(qǐng)將 80 ul DNase 消化液與 2ul DNaseⅠ預(yù)先混合在新的離心管(輕彈或翻轉(zhuǎn)離心管以混合均勻，請(qǐng)勿震蕩)，將 82 ul “DNaseⅠ工作液”加入至吸附柱的膜中心，于室溫（25~28℃）孵育15 分鐘。 注意：如同時(shí)操作多組樣本，請(qǐng)使用前現(xiàn)配新鮮的 DNaseⅠ工作液,請(qǐng)勿預(yù)先配制保存 DNaseⅠ工作液。 9.向吸附柱 CR1 中加入 500μl 溶液 RW，12,000 rpm(~13,400×g)離心 1 min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。 10.向吸附柱 CR1 中加入 600 μl 漂洗液 PW（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入乙醇），12,000 rpm(~13,400×g)離心 1 min，丟棄濾液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。 11.重復(fù)操作步驟 10。 12.12,000rpm(~13,400×g)離心 3 min，將吸附柱 CR1 置于室溫放置數(shù)分鐘，以徹底晾干吸附柱中殘余的乙醇。 注意：此步驟目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，離心后將吸附柱 CR1 在室溫放置片刻，以充分晾干。 如果有漂洗液殘留，可能會(huì)影響后續(xù)的 RT 等實(shí)驗(yàn)。 13.將吸附柱 CR1 轉(zhuǎn)入一個(gè)新的 RNase-Free 離心管中，加入 30-100 μl 無(wú)酶雙蒸水至吸附柱的膜中心，室 溫靜置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g)離心 1 min，得到 RNA 溶液。 注意：洗脫液體積不應(yīng)少于 30μl，體積過(guò)小影響回收效率。為了增加產(chǎn)量，可將步驟 13 得到的 RNA 溶液再加入吸附柱 CR1，放置 2min，12,000rpm(~13,400×g)離心 1min，得到 RNA 溶液。RNA 溶液-70℃中保存。 附錄：從高度黏稠性的富含多酚及多糖成分的樣本中提取 RNA 樟科植物樣本，在裂解后粘稠度高、移取困難，可直接于過(guò)濾柱中進(jìn)行裂解，以減少移液器吸取的步驟。 1.將過(guò)濾柱 CS1 于冰上預(yù)冷，秤取不超過(guò) 30mg 的樣本組織，于液氮中迅速研磨，并將研磨的樣本直接轉(zhuǎn)移至預(yù)冷的過(guò)濾柱 CS1 里（過(guò)濾柱 CS1 放在收集管中）。 2.加入 600ul 裂解液 RS(已添加巰基乙醇)至過(guò)濾柱，于 60℃金屬浴孵育 10 分鐘。 3.12,000 rpm(~13,400×g)離心 5 min，將收集管中的濾液移取至新的 1.5ml 離心管，請(qǐng)避免吸取到沉淀物。 注意：有些樣本可能會(huì)堵塞過(guò)濾柱，可再次離心，或?qū)⒐苤惺Ｓ嗟牧呀庖阂浦列碌倪^(guò)濾柱 CS1 再次離 心。 4.加入 1/3 倍體積的溶液 GP 至濾液中，混合均勻，于冰上孵育 5 分鐘，12,000 rpm(~13,400×g)離心離心 5 min，將上清液小心轉(zhuǎn)移至新的 1.5ml 離心管，不要觸碰或移取固體沉淀。轉(zhuǎn)至上面“操作步驟5”。
總RNA提取試劑盒
基本售價(jià)：1024.00元
選配的試劑蛋白酶K（20mg/ml）目錄號(hào)：GF0202-01，客戶自備，提取動(dòng)物組織總RNA時(shí)需配備 溶菌酶（50mg/ml）目錄號(hào)：GF0203-01，客戶自備，提取細(xì)菌總RNA 時(shí)需配備儲(chǔ)存條件DNase I溶液（DNase I 凍干粉溶解于專(zhuān)用保存液），儲(chǔ)存于-20℃，可反復(fù)凍融； 其他試劑室溫（15-25℃）保存。產(chǎn)品簡(jiǎn)介總RNA提取試劑盒提供了快速簡(jiǎn)單且有效的方法，可從各種動(dòng)物組織、培養(yǎng)細(xì)胞及細(xì)菌、植物組織、 中提取總RNA。本試劑盒采用離心管柱的方式，配合使用我司獨(dú)特的硫氰酸胍裂解液，使組織或細(xì)胞裂解 及均質(zhì)化，并加入乙醇使RNA選擇性的與管柱膜結(jié)合，于操作過(guò)程中加入DNase Ⅰ以去除殘留的基因組DNA，經(jīng)過(guò)多次“洗滌及離心”的步驟去除污染雜質(zhì)，再以無(wú)核酸酶水回收結(jié)合在管柱膜上的RNA。若RNA 小于200nt,如5sRNA、tRNA和microRNA,無(wú)法在此系統(tǒng)中被有效地回收。提取的總RNA純度高，基本沒(méi)有DNA 和蛋白質(zhì)污染，可用于PCR、芯片分析、Blot、PolyA 篩選、體外翻譯、RNase 保護(hù)分析和分子克隆等多種下游實(shí)驗(yàn)。本試劑盒同樣適用酵母，可以從酵母菌中提取總RNA,具體操作方法見(jiàn)“附錄Ⅰ”。本試劑盒也可用于將以其他方法提取的 RAN 進(jìn)行clean up 或去除基因組DNA 污染，詳見(jiàn)“附錄Ⅱ”。預(yù)防RNase污染，應(yīng)注意以下幾方面1. 經(jīng)常更換新手套，因?yàn)槠つw經(jīng)常帶有細(xì)菌，可能導(dǎo)致RNase污染。2. 使用無(wú)RNase的塑料制品和槍頭避免交叉污染。3. RNA在裂解液RL中時(shí)不會(huì)被RNase降解。但提取后繼續(xù)處理過(guò)程中應(yīng)使用不含RNase的塑料和玻璃器皿。玻璃器皿可在150℃烘烤4 h，塑料器皿可在0.5 M NaOH中浸泡10 min，然后用水徹底清洗，再滅菌，即可去除RNase。4. 配制溶液應(yīng)使用無(wú)RNase的水（將水加入到干凈的玻璃瓶中，加入DEPC至終濃度0.1%(V/V)，高壓滅菌）。 使用前注意事項(xiàng)1. 使用前請(qǐng)向裂解液RL 添加 350ul 巰基乙醇，添加過(guò)巰基乙醇的裂解液 4℃保存。2. 使用前請(qǐng)向漂洗液PW 添加 64ml 無(wú)水乙醇。3. 為確保RNA 的品質(zhì)及產(chǎn)量，應(yīng)盡量收取新鮮的動(dòng)物組織進(jìn)行 RNA 提取，或?qū)⒔M織立即以液氮冷凍，儲(chǔ)存于-70℃，組織亦可保存在RANstore 樣本保存液（目錄號(hào)：TR38）中。樣本保存在 RNAstore 試劑中，可于37℃存放 1 天、4℃存放 1 個(gè)月、-20℃永久保存，所提取的 RNA 品質(zhì)與儲(chǔ)存在液氮中相同。操作步驟一、從培養(yǎng)細(xì)胞中提取總 RNA1. 收集細(xì)胞a. 懸浮細(xì)胞的收集（收集細(xì)胞數(shù)量請(qǐng)不要超過(guò) 1×107）：估計(jì)細(xì)胞數(shù)量，300×g 離心 5 min，將細(xì)胞收集到離心管中，仔細(xì)吸除所有培養(yǎng)基上清。b. 單層貼壁細(xì)胞的收集（收集細(xì)胞數(shù)量請(qǐng)不要超過(guò) 1×107）：可直接在培養(yǎng)容器中裂解（容器直徑不超過(guò) 10 cm），或者使用胰蛋白酶處理后離心收集細(xì)胞沉淀。（在搖瓶中培養(yǎng)的單層貼壁細(xì)胞通常采用胰蛋白酶處理的方法。）? 直接裂解法：確定細(xì)胞數(shù)量，徹底吸除細(xì)胞培養(yǎng)基上清，立即進(jìn)行第 2 步裂解步驟。? 胰蛋白酶處理法：確定細(xì)胞數(shù)量，吸除培養(yǎng)基，用 PBS 洗滌細(xì)胞，吸除 PBS，向細(xì)胞中加入含有0.10-0.25%胰蛋白酶的 PBS 處理細(xì)胞，當(dāng)細(xì)胞脫離容器壁時(shí)，加入含有血清的培養(yǎng)基失活胰蛋白酶，將細(xì)胞溶液轉(zhuǎn)移至RNase-Free 的離心管中，300×g 離心 5 min，收集細(xì)胞沉淀，仔細(xì)吸除所有上清。注意：收集細(xì)胞時(shí)一定要將細(xì)胞培養(yǎng)液去除干凈，否則會(huì)導(dǎo)致裂解不完全，影響 RNA 與吸附柱的結(jié)合， 造成RNA 的產(chǎn)量降低;請(qǐng)勿使用過(guò)多的樣本量，避免管柱杜塞而造成 RNA 的產(chǎn)量降低。3. 將所有溶液轉(zhuǎn)移至過(guò)濾柱 CS1 上(過(guò)濾柱 CS1 放在收集管中)，12,000 rpm(~13,400×g)離心 2min，收集濾液。 4. 向?yàn)V液加入等體積 70%乙醇至裂解液中，混勻（此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)沉淀），轉(zhuǎn)至后面“RNA 提取步驟”。 二、從動(dòng)物組織中提取總 RNA1. 勻漿處理：每 10-20 mg 組織加 300 μl 裂解液RL（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入 β-巰基乙醇），用研磨杵將組織徹底研磨（如組織較難徹底研磨，可選用電動(dòng)或玻璃勻漿器）；隨后向勻漿液 中加入 590 μl RNase-Free ddH2O 和10 μl Proteinase K（20mg/ml），混勻后 56℃處理 10-20 min。注意：組織量一定不要超過(guò) 20 mg，否則將導(dǎo)致RNA 得率和質(zhì)量下降。2. 將裂解混合液轉(zhuǎn)移至過(guò)濾柱 CS1(過(guò)濾柱 CS1 放入收集管中)，12,000 rpm(~13,400×g)離心 2min，收集濾液。 3. 向?yàn)V液加入 0.5 倍上清體積的無(wú)水乙醇，均勻（此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)沉淀），轉(zhuǎn)至后面“RNA 提取步驟”。 三、從細(xì)菌中提取總RNA1.4℃12,000 rpm(~13,400×g)離心 2 min 收集菌體（收集菌體的最大量不超過(guò) 1×109），仔細(xì)去除所有培養(yǎng)基上清，以后的所有離心步驟均在室溫（20-25℃）進(jìn)行。注意：如果培養(yǎng)基上清去除不完全，將對(duì)第二步中的細(xì)胞壁消化過(guò)程產(chǎn)生抑制。2. 用含有溶菌酶的 100μl TE 緩沖液（客戶自己配制，配制方法見(jiàn)下表）徹底重懸菌體，孵育時(shí)間見(jiàn)下表。 TE 緩沖液中的溶菌酶終濃度孵育時(shí)間（室溫）G-細(xì)菌400 μg/ ml3-5 minG+細(xì)菌3 mg/ ml5-10 min3. 加入 350μl 裂解液 RL（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入β-巰基乙醇），渦旋振蕩混勻。 4. 將裂解混合液轉(zhuǎn)移至過(guò)濾柱 CS1 上(過(guò)濾柱CS1 放入收集管)，12,000 rpm(~13,400×g)離心 2min，收集濾液。 5. 向?yàn)V液中加入 250μl 無(wú)水乙醇，混勻（此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)沉淀），轉(zhuǎn)至后面“RNA 提取步驟”。 四、從植物組織中提取總 RNA本試劑盒不適用于富含淀粉、酚類(lèi)和次級(jí)代謝物的植物組織（例如一些木本植物，胚乳或絲狀真菌的菌 絲體），因?yàn)?2-ME/裂解液在加入至樣本粉末后，會(huì)變固態(tài)或非常粘稠,此類(lèi)植物組織請(qǐng)使用“多糖多酚植物總RNA 提取kit”（貨號(hào) TR22）。 1. 勻漿處理50-100 mg 植物葉片在液氮中迅速研磨成粉末，加入 450 μl RL（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入β-巰基乙醇），渦旋劇烈震蕩混勻，并于 56℃孵育 3 分鐘。 注意 1：在 56℃孵育 1-3 min 將有助于植物組織裂解，但是對(duì)于某些富含淀粉的樣品，請(qǐng)不要加熱處理， 防止因淀粉引起的樣品膨脹現(xiàn)象。注意 2：由于植物多樣性非常豐富，而且同種植物的不同生長(zhǎng)發(fā)育階段和不同組織的 RNA 含量都不相同， 請(qǐng)根據(jù)具體實(shí)驗(yàn)情況選擇合適的植物材料的用量。2. 將所有溶液轉(zhuǎn)移至過(guò)濾柱 CS1 上(過(guò)濾柱 CS1 放在收集管中)，12,000 rpm(~13,400×g)離心 2-5 min，小心吸取收集管中的上清至RNase-Free 的離心管中，吸頭盡量避免接觸收集管中的細(xì)胞碎片沉淀。注意：由于裂解液較粘稠，所以將溶液轉(zhuǎn)移至過(guò)濾柱時(shí)，可以剪去部分吸頭末端。3. 緩慢加入 0.5 倍上清體積的無(wú)水乙醇，混勻（此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)沉淀），轉(zhuǎn)至“RNA 提取步驟”。 u RNA 提取步驟 此為續(xù)接樣本制備“一、二、三、四、五”后的RNA 提取操作步驟。1. 將前一步所得“裂解液/乙醇混合液”（含沉淀），移取至吸附柱 CR1 中（吸附柱 CR1 放入收集管中），12,000 rpm (~13,400×g )離心 30-60 sec，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱 CR1 放回收集管中。注意：將溶液和沉淀轉(zhuǎn)移至吸附柱CR1 時(shí)，如果體積大于吸附柱容量，可以分次完成。2. 向吸附柱CR1 中加入 500ul 溶液RW，12,000 rpm (~13,400×g )離心離心 1 min，丟棄濾液，將吸附柱CR1 放回收集管中。3. DNase Ⅰ降解。每一純化反應(yīng)，請(qǐng)將 80 ul DNase 消化液與 2ul DNaseⅠ預(yù)先混合在新的離心管(輕彈或翻轉(zhuǎn)離心管以混合均勻，請(qǐng)勿震蕩)，將 82 ul “DNaseⅠ工作液”加入至吸附柱的膜中心，于室溫（25~28℃）孵育15 分鐘。注意：如同時(shí)操作多組樣本，請(qǐng)使用前現(xiàn)配新鮮的 DNaseⅠ工作液,請(qǐng)勿預(yù)先配制保存 DNaseⅠ工作液。4.向吸附柱CR1 中加入 500μl 溶液RW，12,000 rpm(~13,400×g)離心 1 min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱CR1 放回收集管中。5. 向吸附柱CR1 中加入 600μl 漂洗液 PW（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入乙醇），12,000 rpm(~13,400×g) 離心 1 min，倒掉收集管中的廢液，將吸附柱CR1 放回收集管中。6. 重復(fù)操作步驟 5。7.12,000 rpm(~13,400×g)離心 3 min，將吸附柱CR1 置于室溫放置數(shù)分鐘，以徹底晾干吸附材料中殘余的乙醇。注意：此步驟目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，離心后將吸附柱 CR1 在室溫放置片刻，以充分晾干。如果有漂洗液殘留，可能會(huì)影響后續(xù)的 RT 等實(shí)驗(yàn)。8. 將吸附柱CR1 轉(zhuǎn)入一個(gè)新的 RNase-Free 離心管中，加入 30-100 μl 無(wú)酶雙蒸水至吸附柱的膜中心，室溫靜置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g)離心 1 min，得到 RNA 溶液。注意：洗脫緩沖液體積不應(yīng)少于 30 μl，體積過(guò)小影響回收效率；RNA 溶液請(qǐng)于-70℃保存。附錄Ⅰ：從酵母菌中提取總 RNA一、需要自備的試劑：a.溶壁酶（Lyticase）：目錄號(hào) GF0210-01 b.山梨醇 buffer：用0.1M磷酸鈉緩沖液(pH7.4)配制1.2 M山梨醇;0.1M磷酸鈉緩沖液(pH7.4)的配制：77.4 ml 0.1 mol/L Na2HPO4+ 22.6ml 0.1mol/L NaH2PO4二、操作步驟1. 取酵母細(xì)胞（最多不超過(guò)5×107cells），12,000 rpm(~13,400×g )離心1 min，盡量吸除上清（菌液較多時(shí)可以通過(guò)幾次離心將菌體沉淀收集到一個(gè)離心管中）。2. 酵母細(xì)胞壁的破除：酶法：向菌體中加入1ml山梨醇buffer，加入大約50U Lyticase（需自備，我司目錄號(hào)：GF0210-01）充分混勻，30℃孵育30min，300×g離心5 min，棄上清，收集沉淀。注意：以上為5×107酵母細(xì)胞的Lyticase用量，根據(jù)酵母的菌株和酵母細(xì)胞數(shù)量的不同，所用Lyticase 的濃度和孵育時(shí)間應(yīng)該進(jìn)行適當(dāng)調(diào)整。3. 加入 350 μl 裂解液 RL（在使用前請(qǐng)加入 β-巰基乙醇），渦旋振蕩混勻，將裂解混合液轉(zhuǎn)移至過(guò)濾柱 CS1上(過(guò)濾柱 CS1 放入收集管中)，12,000 rpm(~13,400×g)離心 2min，收集濾液。4. 向?yàn)V液中加入 350μl 70%乙醇，混勻（此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)沉淀），轉(zhuǎn)至上面“RNA 提取步驟”。 附錄Ⅱ：RNA Clean -Up 或基因組 DNA 去除。本試劑盒可用于將以其他方法提取的 RAN 進(jìn)行clean up 或去除基因組DNA 污染。1. 將RNA 以無(wú)酶水調(diào)整體積至 100ul，加入 350ul 的裂解液 RL（使用前請(qǐng)加入β 巰基乙醇），混合均勻。2. 加入 250ul 的無(wú)水乙醇至裂解液中，混勻，轉(zhuǎn)至上面“RNA 提取步驟”。
多糖多酚植物基因組DNA提取試劑盒
基本售價(jià)：544.00元
儲(chǔ)存條件 該試劑盒置于室溫（15-25℃）干燥條件下，可保存18個(gè)月，更長(zhǎng)時(shí)間的保存可置于2-8℃。2-8℃保 存條件下，若溶液產(chǎn)生沉淀，使用前應(yīng)將試劑盒內(nèi)的溶液在室溫放置一段時(shí)間，必要時(shí)可在37℃水浴中預(yù) 熱10 min，以溶解沉淀。 產(chǎn)品簡(jiǎn)介及特點(diǎn) 本試劑盒采用特異性結(jié)合 DNA 的離心吸附柱和獨(dú)特的緩沖系統(tǒng)，能從多種植物組織中分離純化高質(zhì)量 基因組 DNA，獨(dú)特的沉淀溶液可以沉淀去除多糖多酚植物樣本中的蛋白質(zhì)、多糖以及酚類(lèi)等雜質(zhì)。提取的基 因組 DNA 純度高，質(zhì)量穩(wěn)定可靠。 使用本試劑盒純化的基因組 DNA 適用于各種常規(guī)操作，包括酶切、PCR、文庫(kù)構(gòu)建、Southern 雜交、芯 片檢測(cè)、高通量測(cè)序等實(shí)驗(yàn)。 簡(jiǎn)便快捷：1 h內(nèi)即可獲得高純度的基因組DNA。 適用廣泛：適用于多種植物組織，尤其是多糖多酚植物。 安全無(wú)毒：無(wú)需酚/氯仿等有毒有機(jī)試劑。 超純高效：高效獲得高純度的DNA，可直接用于PCR、酶切、雜交等分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)。 注意事項(xiàng) 1.樣品應(yīng)避免反復(fù)凍融，否則會(huì)導(dǎo)致提取的 DNA 片段較小且提取量也下降。 2.若溶液 GS1 或溶液 PBC 中有沉淀，可在 37℃水浴中重新溶解，搖勻后使用。 事前準(zhǔn)備： 1.溶液 GS2 制備：加入 2ml 無(wú)菌水到 0.46g 溶液 GS2 濃縮液粉末中,旋渦 1 分鐘，50℃孵育至完全溶解，得 溶液 GS2。制備好的溶液 GS2 長(zhǎng)期保存需要儲(chǔ)存在 4℃。 2.向溶液 PBC 中加入 30ml 無(wú)水乙醇，混勻，室溫保存。 3.向漂洗液 PW 中加入 64ml 無(wú)水乙醇，混勻，室溫保存。 4.在研磨組織之前解凍溶液 GS2;將水浴或金屬浴預(yù)熱至 65℃。 操作步驟使用前請(qǐng)先在溶液PBC和漂洗液PW中加入無(wú)水乙醇，加入體積請(qǐng)參照瓶上的標(biāo)簽。 1.取植物新鮮組織約 100 mg 或干重組織約 30 mg，加入液氮充分碾磨。 注意：使用超過(guò)推薦量的樣品可能堵塞吸附柱，降低回收率和質(zhì)量。 2.立即將研磨好的粉末迅速轉(zhuǎn)移至 1.5 ml 微量離心管中，并添加 360μ 溶液 GS1、40μl 制備好的溶液 GS2 和 25μl RNaseA 溶液，迅速渦旋混勻。 注意：不要預(yù)先混合這些溶液。 注意：為了獲得最佳產(chǎn)量，徹底研磨組織，不充分研磨的組織中的 DNA 可能無(wú)法被試劑接觸到;為了得到 完整的 DNA，新鮮組織應(yīng)在液氮中迅速冷凍并存儲(chǔ)在-80℃中。 3.將離心管放在 65℃水浴 20 min，水浴過(guò)程中顛倒離心管以混合樣品數(shù)次。 4.加入 130 μl 溶液 PGP，渦旋振蕩 1 min，混勻后將離心管置于冰上靜置 5min，然后 12,000 rpm (~13,400×g ) 離心 5 min。 5.轉(zhuǎn)移上清至過(guò)濾柱 CS1 中（過(guò)濾柱 CS1 放在收集管中），12,000 rpm (~13,400×g)離心 1 min ，轉(zhuǎn)移濾 液至新的離心管中。 6.向?yàn)V液中加入 1.5 倍體積的“溶液 PBC（已添加無(wú)水乙醇）”，充分混勻，此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)絮狀沉淀，但不 影響后續(xù) DNA 的純化。 例如：對(duì)于 500ul 濾液，加入 750ul 溶液 PBC（已添加無(wú)水乙醇） 7.將上一步所得溶液和絮狀沉淀“分次”轉(zhuǎn)移到吸附柱 CG1 中（吸附柱 CG1 放在收集管中），12,000 rpm (~13,400×g ) 離心 1 min，倒掉廢液，將吸附柱 CG1 放入收集管中。 8.向吸附柱 CG1 中加入 700μl 漂洗液 PW（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入無(wú)水乙醇），12,000 rpm (~13,400× g)離心 1 min，丟棄廢液，將吸附柱 CG1 放入收集管中。 9.重復(fù)操作步驟 8。 10.將吸附柱 CG1 放回收集管中，12,000 rpm (~13,400×g)離心 2 min，棄收集管，然后將吸附柱 CG1 轉(zhuǎn)移 到新的離心管中，室溫晾干 5-10 min。 注意：乙醇?xì)埩魰?huì)抑制后續(xù)的酶反應(yīng)，所以晾干時(shí)要確保乙醇揮發(fā)干凈，但也不要干燥太長(zhǎng)時(shí)間，以免 難以洗脫 DNA。 11.在吸附柱 CG1 中加入 50-200μl 洗脫緩沖液 TB，室溫放置 3-5 min，12,000rpm(~13,400×g)離心 2 min， 將溶液收集到離心管中。 注意：洗脫緩沖液體積不應(yīng)少于 50μl，體積過(guò)小影響回收效率。洗脫液的 pH 值對(duì)于洗脫效率有很大影 響。若用 ddH2O 做洗脫液應(yīng)保證其 pH 值在 7.0-8.5 范圍內(nèi)，pH 值低于 7.0 會(huì)降低洗脫效率；且 DNA 產(chǎn)物 應(yīng)保存在-20℃，以防 DNA 降解。 為增加基因組 DNA 的得率，可將離心得到的溶液再加入吸附柱 CG1 中， 室溫放置 2 min，12,000 rpm (~13,400×g )離心 2 min。
植物基因組DNA提取試劑盒
基本售價(jià)：544.00元
儲(chǔ)存條件 該試劑盒置于室溫（15-25℃）干燥條件下，可保存18個(gè)月，更長(zhǎng)時(shí)間的保存可置于2-8℃。2-8℃保存條件下，若溶液產(chǎn)生沉淀，使用前應(yīng)將試劑盒內(nèi)的溶液在室溫放置一段時(shí)間，必要時(shí)可在37℃水浴中預(yù)熱10 min，以溶解沉淀。 產(chǎn)品簡(jiǎn)介及特點(diǎn) 本試劑盒采用特異性結(jié)合 DNA 的離心吸附柱和獨(dú)特的緩沖系統(tǒng)，能從多種植物組織中分離純化高質(zhì)量基因組 DNA，獨(dú)特的沉淀溶液可以沉淀去除多糖多酚植物樣本中的蛋白質(zhì)、多糖以及酚類(lèi)等雜質(zhì)。提取的基因組 DNA 純度高，質(zhì)量穩(wěn)定可靠。 使用本試劑盒純化的基因組 DNA 適用于各種常規(guī)操作，包括酶切、PCR、文庫(kù)構(gòu)建、Southern 雜交、芯片檢測(cè)、高通量測(cè)序等實(shí)驗(yàn)。 簡(jiǎn)便快捷：1 h內(nèi)即可獲得高純度的基因組DNA。 適用廣泛：適用于多種植物組織，包括多糖多酚植物。 安全無(wú)毒：無(wú)需酚/氯仿等有毒有機(jī)試劑。 超純高效：高效獲得高純度的DNA，可直接用于PCR、酶切、雜交等分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)。 注意事項(xiàng) 1.樣品應(yīng)避免反復(fù)凍融，否則會(huì)導(dǎo)致提取的 DNA 片段較小且提取量也下降。 2.若溶液 GS1 或溶液 BC 中有沉淀，可在 37℃水浴中重新溶解，搖勻后使用。 事前準(zhǔn)備： 1.溶液 GS2 制備：加入 2ml 無(wú)菌水到 0.46g 溶液 GS2 濃縮液粉末中,旋渦 1 分鐘，50℃孵育至完全溶解，得溶液 GS2。 制備好的溶液 GS2 長(zhǎng)期保存需要儲(chǔ)存在 4℃。 2.向溶液 BC 中加入 30ml 無(wú)水乙醇，混勻，室溫保存。 3.向漂洗液 PW 中加入 64ml 無(wú)水乙醇，混勻，室溫保存。 4.在研磨組織之前解凍溶液 GS2;將水浴或金屬浴預(yù)熱至 65℃。 操作步驟 使用前請(qǐng)先在溶液BC和漂洗液PW中加入無(wú)水乙醇，加入體積請(qǐng)參照瓶上的標(biāo)簽。 1.取植物新鮮組織約 100 mg 或干重組織約 30 mg，加入液氮充分碾磨。 注意：使用超過(guò)推薦量的樣品可能堵塞吸附柱，降低回收率和質(zhì)量。 2.立即將研磨好的粉末迅速轉(zhuǎn)移至 1.5 ml 微量離心管中，并添加 360μ 溶液 GS1、40μl 制備好的溶液 GS2和 25μl RNaseA 溶液，迅速渦旋混勻。 注意：不要預(yù)先混合這些溶液。 注意：為了獲得最佳產(chǎn)量，徹底研磨組織，不充分研磨的組織中的 DNA 可能無(wú)法被試劑接觸到;為了得到完整的 DNA，新鮮組織應(yīng)在液氮中迅速冷凍并存儲(chǔ)在-80℃中。 3.將離心管放在 65℃水浴 20 min，水浴過(guò)程中顛倒離心管以混合樣品數(shù)次。 4.加入 130 μl 溶液 GP，渦旋振蕩 1 min，混勻后將離心管置于冰上靜置 5min，然后 12,000 rpm (~13,400×g )離心 5 min。 5.轉(zhuǎn)移上清至過(guò)濾柱 CS1 中（過(guò)濾柱 CS1 放在收集管中），12,000 rpm (~13,400×g)離心 1 min ，轉(zhuǎn)移濾液至新的離心管中。 6.向?yàn)V液中加入 1.5 倍體積的“溶液 BC（已添加無(wú)水乙醇）”，充分混勻，此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)絮狀沉淀，但不影響后續(xù) DNA 的純化。 例如：對(duì)于 500ul 濾液，加入 750ul 溶液 BC（已添加無(wú)水乙醇） 7.將上一步所得溶液和絮狀沉淀“分次”轉(zhuǎn)移到吸附柱 CG1 中（吸附柱 CG1 放在收集管中），12,000 rpm(~13,400×g ) 離心 1 min，倒掉廢液，將吸附柱 CG1 放入收集管中。 8.向吸附柱 CG1 中加入 700μl 漂洗液 PW（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入無(wú)水乙醇），12,000 rpm (~13,400×g)離心 1 min，丟棄廢液，將吸附柱 CG1 放入收集管中。 9.重復(fù)操作步驟 8。 10.將吸附柱 CG1 放回收集管中，12,000 rpm (~13,400×g)離心 2 min，棄收集管，然后將吸附柱 CG1 轉(zhuǎn)移到新的離心管中，室溫晾干 5-10 min。 注意：乙醇?xì)埩魰?huì)抑制后續(xù)的酶反應(yīng)，所以晾干時(shí)要確保乙醇揮發(fā)干凈，但也不要干燥太長(zhǎng)時(shí)間，以免難以洗脫 DNA。 11.在吸附柱 CG1 中加入 50-200μl 洗脫緩沖液 TB，室溫放置 3-5 min，12,000rpm(~13,400×g)離心 2 min，將溶液收集到離心管中。 注意：洗脫緩沖液體積不應(yīng)少于 50μl，體積過(guò)小影響回收效率。洗脫液的 pH 值對(duì)于洗脫效率有很大影響。若用 ddH2O 做洗脫液應(yīng)保證其 pH 值在 7.0-8.5 范圍內(nèi)，pH 值低于 7.0 會(huì)降低洗脫效率；且 DNA 產(chǎn)物應(yīng)保存在-20℃，以防 DNA 降解。 為增加基因組 DNA 的得率，可將離心得到的溶液再加入吸附柱 CG1 中，室溫放置 2 min，12,000 rpm (~13,400×g )離心 2 min。
酵母基因組DNA提取試劑盒
基本售價(jià)：384.00元
選配試劑RNase A (100 mg/ml)目錄號(hào)：GF020-01儲(chǔ)存條件該試劑盒置于室溫（15-25℃）干燥條件下，可保存18個(gè)月，更長(zhǎng)時(shí)間的保存可置于2-8℃。2-8℃保存條件下，若溶液產(chǎn)生沉淀，使用前應(yīng)將試劑盒內(nèi)的溶液在室溫放置一段時(shí)間，必要時(shí)可在37℃水浴中預(yù)熱10 min，以溶解沉淀。產(chǎn)品簡(jiǎn)介本試劑盒采用可以特異性結(jié)合 DNA 的離心吸附柱，和獨(dú)特的緩沖液系統(tǒng)，能高效、專(zhuān)一吸附 DNA，可有效去除雜質(zhì)蛋白及細(xì)胞中其他有機(jī)化合物,用來(lái)提取酵母細(xì)胞中的基因組 DNA。不需要苯酚、氯仿等有機(jī)溶劑，安全方便；提取的基因組 DNA 片段大，純度高，質(zhì)量穩(wěn)定可靠。使用本試劑盒回收的 DNA 可適用于各種常規(guī)操作，包括酶切、PCR、文庫(kù)構(gòu)建、Southern 雜交等實(shí)驗(yàn)。菌體濃度檢測(cè)可采用分光光度計(jì)或平板培養(yǎng)法檢測(cè)菌體量，一般對(duì)于釀酒酵母，OD600值為1.0時(shí)，相當(dāng)于1-2×107cells / ml。注意事項(xiàng)1.樣品應(yīng)避免反復(fù)凍融，否則會(huì)導(dǎo)致提取的 DNA 片段較小且提取量也下降。2.若溶液 GA 或溶液 BG 中有沉淀，可在 37℃水浴中重新溶解，搖勻后使用。3.所有離心步驟均為使用臺(tái)式離心機(jī)，室溫下離心。需要自備的試劑1.溶壁酶 Lyticase（目錄號(hào)：GF0210-01）2.山梨醇 buffer：用0.1M磷酸鈉緩沖液(pH7.4)配制1.2 M山梨醇;0.1M磷酸鈉緩沖液(pH7.4)的配制：77.4 ml 0.1 mol/L Na2HPO4+ 22.6ml 0.1mol/L NaH2PO4操作步驟 使用前請(qǐng)先在漂洗液PW中加入無(wú)水乙醇，加入體積請(qǐng)參照瓶上的標(biāo)簽。 1.取酵母細(xì)胞（最多不超過(guò)5×107 cells），12,000 rpm(~13,400×g )離心1 min，盡量吸除上清（菌液較多時(shí)可以通過(guò)幾次離心將菌體沉淀收集到一個(gè)離心管中）。 2.酵母細(xì)胞壁的破除： 酶法：向菌體中加入600 μl山梨醇buffer，加入大約200 U Lyticase（客戶自備，目錄號(hào)：GF1203-01），充分混勻。30℃處理30 min。4000 rpm(~1500×g)離心10 min，棄上清，收集沉淀。 注意：以上為5×107酵母細(xì)胞的Lyticase用量，根據(jù)酵母的菌株和酵母細(xì)胞數(shù)量的不同，所用Lyticase的濃度和孵育時(shí)間應(yīng)該進(jìn)行適當(dāng)調(diào)整。 3. 向沉淀中加入200 μl溶液GA重懸沉淀，充分混勻。 如果需要去除RNA，可加入4 μl RNase A（100 mg/ml）溶液（客戶自備，目錄號(hào)：GF020-01），振蕩15 sec，室溫放置5 min。 4.加入20 μl Proteinase K溶液，混勻。 5.加入200 μl溶液BG，充分顛倒混勻，70℃放置10 min，溶液應(yīng)變清亮，簡(jiǎn)短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠。 注意：加入緩沖液GB時(shí)可能會(huì)產(chǎn)生白色沉淀，一般70℃放置時(shí)會(huì)消失，不會(huì)影響后續(xù)實(shí)驗(yàn)。如溶液未變清亮，說(shuō)明細(xì)胞裂解不徹底，可能導(dǎo)致提取DNA量少和提取的DNA不純。 6.加入 200ul 無(wú)水乙醇，充分振蕩混勻 15sec，此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)絮狀沉淀，簡(jiǎn)短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠。 7.將上一步所得溶液和絮狀沉淀都加入一個(gè)吸附柱 CG1 中（吸附柱放入收集管中），12,000 rpm (~13,400×g)離心 30 sec，倒掉廢液，將吸附柱 CG1 放回收集管中。 8.向吸附柱 CG1 中加入 300μl 溶液 BG，12,000rpm (~13,400×g)離心 30 sec，倒掉廢液，將吸附柱 CG1 放入收集管中。 注意：這一步驟對(duì)于清除內(nèi)切酶是必不可少的，以防止污染。 9.向吸附柱 CG1中加入 700μl 漂洗液 PW（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入無(wú)水乙醇），12,000 rpm (~13,400×g)離心 30 sec，倒掉廢液，將吸附柱 CG1 放入收集管中。 10.重復(fù)操作步驟 9。 11.將吸附柱 CG1 放回收集管中，12,000 rpm(~13,400×g)離心 2 min，倒掉廢液。將吸附柱 CG1 置于室溫放置數(shù)分鐘，以徹底晾干吸附材料中殘余的漂洗液。 注意：這一步的目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的殘留會(huì)影響后續(xù)的酶反應(yīng)（酶切、PCR 等）實(shí)驗(yàn)。 12.將吸附柱 CG1 轉(zhuǎn)入一個(gè)干凈的離心管中，向吸附膜的中間部位懸空滴加 50-200μl 洗脫緩沖液 TB，室溫放置 2-5 min，12,000 rpm (~13,400×g)離心 2 min，將溶液收集到離心管中。 注意：洗脫液體積不應(yīng)少于 50μl，體積過(guò)小影響回收效率。洗脫液的 pH 值對(duì)于洗脫效率有很大影響。若用 ddH2O 做洗脫液應(yīng)保證其 pH 值在 7.0-8.5 范圍內(nèi)，pH 值低于 7.0 會(huì)降低洗脫效率；DNA 產(chǎn)物應(yīng)保存在-20℃，以防 DNA 降解。為增加基因組 DNA 的得率，可將離心得到的溶液再加入吸附柱 CG1 中,室溫放置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g )離心 2 min。
細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒
基本售價(jià)：336.00元
選配試劑RNase A (100 mg/ml)目錄號(hào)：GF0201-01；溶菌酶溶液（50 mg/ml）目錄號(hào)：GF0203-01儲(chǔ)存條件該試劑盒置于室溫（15-25℃）干燥條件下，可保存18個(gè)月，更長(zhǎng)時(shí)間的保存可置于2-8℃。2-8℃保存條件下，若溶液產(chǎn)生沉淀，使用前應(yīng)將試劑盒內(nèi)的溶液在室溫放置一段時(shí)間，必要時(shí)可在37℃水浴中預(yù)熱10 min，以溶解沉淀。產(chǎn)品簡(jiǎn)介及特點(diǎn)本試劑盒采用可以特異性結(jié)合 DNA 的離心吸附柱，和獨(dú)特的緩沖液系統(tǒng)，能高效、專(zhuān)一吸附 DNA，可有效去除雜質(zhì)蛋白及細(xì)胞中其他有機(jī)化合物,用來(lái)提取細(xì)菌的基因組 DNA。不需要苯酚、氯仿等有機(jī)溶劑，安全方便；提取的基因組 DNA 片段大，純度高，質(zhì)量穩(wěn)定可靠。使用本試劑盒回收的 DNA 可適用于各種常規(guī)操作，包括酶切、PCR、文庫(kù)構(gòu)建、Southern 雜交等實(shí)驗(yàn)。提取得率材料 提取量 DNA 得率細(xì)菌培養(yǎng)液 106 -108 cells 5-20ug注意事項(xiàng)1.樣品應(yīng)避免反復(fù)凍融，否則會(huì)導(dǎo)致提取的 DNA 片段較小且提取量也下降。2.若溶液 GA 或溶液 BG 中有沉淀，可在 37℃水浴中重新溶解，搖勻后使用。3.所有離心步驟均為使用臺(tái)式離心機(jī)，室溫下離心。操作步驟使用前請(qǐng)先在漂洗液PW中加入無(wú)水乙醇，加入體積請(qǐng)參照瓶上的標(biāo)簽。1.取細(xì)菌培養(yǎng)液1-5 ml，10,000 rpm(~11,500×g)離心1 min，盡量吸凈上清。2.向菌體沉淀中加入200 μl溶液GA，振蕩至菌體徹底懸浮。注意：對(duì)于較難破壁的革蘭氏陽(yáng)性菌，可略過(guò)第2步驟，加入溶菌酶溶液進(jìn)行破壁處理，具體方法為：加入110 μl溶菌酶緩沖液（20 mM Tris, pH 8.0；2 mM Na2-EDTA；1.2%Triton），和70 μl溶菌酶溶液（50 mg/ml，客戶自備，目錄號(hào)：RT401），37 ℃處理30min以上。 如果需要去除RNA，可加入4 μlRNase A（100 mg/ml）溶液（客戶自備，目錄號(hào)：GF1202-01），振蕩15 sec，室溫放置5 min。 3.向管中加入20μl Proteinase K溶液，混勻。 4.加入200 μl溶液BG，振蕩15 sec，70 ℃放置10 min，溶液應(yīng)變清亮，簡(jiǎn)短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠。 注意：加入緩沖液GB時(shí)可能會(huì)產(chǎn)生白色沉淀，一般70℃放置時(shí)會(huì)消失，不會(huì)影響后續(xù)實(shí)驗(yàn)。如溶液未變清亮，說(shuō)明細(xì)胞裂解不徹底，可能導(dǎo)致提取DNA量少和提取出的DNA不純。 5.加入 200ul 無(wú)水乙醇，充分振蕩混勻 15sec，此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)絮狀沉淀，簡(jiǎn)短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠。 6.將上一步所得溶液和絮狀沉淀都加入一個(gè)吸附柱 CG1 中（吸附柱放入收集管中），12,000 rpm (~13,400×g)離心 30 sec，倒掉廢液，將吸附柱 CG1 放回收集管中。 7.向吸附柱 CG1 中加入 300μl 溶液 BG，12,000rpm (~13,400×g)離心 30 sec，倒掉廢液，將吸附柱 CG1 放入收集管中。 注意：這一步驟對(duì)于清除內(nèi)切酶是必不可少的，以防止污染。 8.向吸附柱 CG1中加入 700μl 漂洗液 PW（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入無(wú)水乙醇），12,000 rpm (~13,400×g)離心 30 sec，倒掉廢液，將吸附柱 CG1 放入收集管中。 9.重復(fù)操作步驟 8。 10.將吸附柱 CG1 放回收集管中，12,000 rpm(~13,400×g)離心 2 min，倒掉廢液。將吸附柱 CG1 置于室溫放置數(shù)分鐘，以徹底晾干吸附材料中殘余的漂洗液。 注意：這一步的目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的殘留會(huì)影響后續(xù)的酶反應(yīng)（酶切、PCR 等）實(shí)驗(yàn)。 11.將吸附柱 CG1 轉(zhuǎn)入一個(gè)干凈的離心管中，向吸附膜的中間部位懸空滴加 50-200μl 洗脫緩沖液 TB，室溫放置 2-5 min，12,000 rpm (~13,400×g)離心 2 min，將溶液收集到離心管中。 注意：洗脫液體積不應(yīng)少于 50μl，體積過(guò)小影響回收效率。洗脫液的 pH 值對(duì)于洗脫效率有很大影響。 若用 ddH2O 做洗脫液應(yīng)保證其 pH 值在 7.0-8.5 范圍內(nèi)，pH 值低于 7.0 會(huì)降低洗脫效率；DNA 產(chǎn)物應(yīng)保存在-20℃，以防 DNA 降解。為增加基因組 DNA 的得率，可將離心得到的溶液再加入吸附柱 CG1 中,室溫放置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g )離心 2 min。
血液/細(xì)胞/組織基因組DNA提取試劑盒
基本售價(jià)：1200.00元
血液/細(xì)胞/組織基因組 DNA 純化試劑盒 產(chǎn)品組成 GF304-02 GF304-03 (50 preps) (200 preps) 溶液 GA (Buffer GA) 15 ml 60 ml 溶液 BG (Buffer BG) 30ml 120ml 蛋白酶 K (20mg/ml) 1.1ml 4*1.1ml 漂洗液 PW (Buffer PW) 16ml（使用前請(qǐng)先加入 64ml 無(wú)水乙醇） 64ml（使用前請(qǐng)先加入 256ml 無(wú)水乙醇） 洗脫緩沖液 TB (Buffer TB) 15 ml 60 ml 吸附柱 CG1 (Spin Columns CG1) 50 個(gè) 200 個(gè) 收集管(2 ml) (Collection Tubes 2ml) 50 個(gè) 200 個(gè) 選配試劑紅細(xì)胞裂解液（Red Cell Lysis Buffer 貨號(hào)：GF1201-01）;RNase A (100mg/ml) 貨號(hào)：GF0201-01) 儲(chǔ)存條件該試劑盒置于室溫（15-25℃）干燥條件下，可保存18個(gè)月，更長(zhǎng)時(shí)間的保存可置于2-8℃。2-8℃保 存條件下，若溶液產(chǎn)生沉淀，使用前應(yīng)將試劑盒內(nèi)的溶液在室溫放置一段時(shí)間，必要時(shí)可在37℃水浴中預(yù) 熱10 min，以溶解沉淀。 產(chǎn)品簡(jiǎn)介及特點(diǎn)本試劑盒采用可以特異性結(jié)合DNA 的離心吸附柱，和獨(dú)特的緩沖液系統(tǒng)，能高效、專(zhuān)一吸附DNA，可有 效去除雜質(zhì)蛋白及細(xì)胞中其他有機(jī)化合物,用來(lái)提取多種細(xì)胞中的基因組 DNA。不需要苯酚、氯仿等有機(jī)溶劑，安全方便；提取的基因組 DNA 片段大，純度高，質(zhì)量穩(wěn)定可靠。根據(jù)不同的樣本量和樣本類(lèi)型，可以提取的DNA 產(chǎn)量范圍為 1-40ug。 使用本試劑盒回收的 DNA 可適用于各種常規(guī)操作，包括酶切、PCR、文庫(kù)構(gòu)建、Southern 雜交等實(shí)驗(yàn)。 注意事項(xiàng) 1. 樣品應(yīng)避免反復(fù)凍融，否則會(huì)導(dǎo)致提取的DNA 片段較小且提取量也下降。2. 若溶液 GA 或溶液BG 中有沉淀，可在 37℃水浴中重新溶解，搖勻后使用。 3. 所有離心步驟均為使用臺(tái)式離心機(jī)，室溫下離心。操作步驟 使用前請(qǐng)先在漂洗液PW中加入無(wú)水乙醇，加入體積請(qǐng)參照瓶上的標(biāo)簽。1.處理材料a. 如提取材料為血液，可直接使用 200μl 新鮮、冷凍或加入各種抗凝劑的血液，不足 200 μl 可加溶液GA 補(bǔ)足；注意：如需處理更大體積血液，如 300μl-1 ml，應(yīng)按以下步驟操作：在樣品中加入 3 倍體積紅細(xì)胞裂解液 （例如，300μl 血液加入 900μl 紅細(xì)胞裂解液），顛倒混勻，室溫放置 5 min，期間再顛倒混勻幾次。10000 rpm(~11,500×g)離心 1 min（若離心機(jī)最高轉(zhuǎn)速不允許，可 3000 rpm(~3,400×g)離心5 min），吸去上清，留下白細(xì)胞沉淀，加 200 μl 溶液 GA，振蕩至徹底混勻。 紅細(xì)胞裂解液本公司另外有售（貨號(hào)：GF1201-01），可根據(jù)需要來(lái)決定購(gòu)買(mǎi)。 b. 如果處理血樣為禽類(lèi)、鳥(niǎo)類(lèi)、兩棲類(lèi)或更低級(jí)生物的抗凝血液，其紅細(xì)胞為有核細(xì)胞，因此處理量 5- 20μl，可加溶液 GA 補(bǔ)足 200 μl 后進(jìn)行下面的裂解步驟。c. 貼壁培養(yǎng)的細(xì)胞應(yīng)先處理為細(xì)胞懸液，然后 10,000 rpm(~11,200×g)離心 1 min，倒盡上清，加 200 μl 溶液GA，振蕩至徹底懸浮。d. 動(dòng)物組織（脾組織用量應(yīng)少 10 mg）應(yīng)先打碎處理為細(xì)胞懸液，然后 10,000rpm(~11,200×g)離心 1 min，倒盡上清，加 200 μl 緩沖液 GA，振蕩至徹底懸浮。注意：如果需要去除RNA，可加入 4 μl RNaseA（100 mg/ml）溶液（客戶自備，目錄號(hào)：GF0201-01）， 振蕩 15 sec，室溫放置 5 min。2. 加入 20μl Proteinase K 溶液，混勻。 a.提取血液基因組時(shí)，加入Proteinase K，混勻，即可繼續(xù)進(jìn)行下一步。 b.提取細(xì)胞基因組時(shí)，加入Proteinase K，混勻，即可繼續(xù)進(jìn)行下一步。 c.提取組織基因組時(shí)，加入 Proteinase K 混勻后，在 56℃放置，直至組織溶解，簡(jiǎn)短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠，再進(jìn)行下一步驟。注意：不同組織裂解時(shí)間不同，通常需 1-3 h 即可完成（鼠尾需要消化過(guò)夜），每小時(shí)顛倒混合樣品 2-3次，用水浴振蕩器也可。3. 加入 200ul 溶液 BG，充分顛倒混勻，70℃放置 10 min,溶液應(yīng)變清亮，簡(jiǎn)短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠。注意：加入溶液 BG 時(shí)可能會(huì)產(chǎn)生白色沉淀，一般 70℃放置時(shí)會(huì)消失,不會(huì)影響后續(xù)實(shí)驗(yàn)。如溶液未變清亮，說(shuō)明細(xì)胞裂解不徹底，可能導(dǎo)致提取 DNA 量少和提取出的DNA 不純。當(dāng)血液體積≤200μl 且沒(méi)有采用紅細(xì)胞裂解處理，或是樣本儲(chǔ)存條件不佳，水浴后顏色可能為深褐色，注意溶液中沒(méi)有團(tuán)塊等沉淀。4. 加入 200ul 無(wú)水乙醇，充分振蕩混勻 15sec，此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)絮狀沉淀，簡(jiǎn)短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠。 5. 將上一步所得溶液和絮狀沉淀都加入一個(gè)吸附柱CG1 中（吸附柱放入收集管中），12,000 rpm (~13,400×g)離心 30 sec，倒掉廢液，將吸附柱CG1 放回收集管中。 6. 向吸附柱CG1 中加入 300μl 溶液BG，12,000rpm (~13,400×g)離心 30 sec，倒掉廢液，將吸附柱 CG1 放入收集管中。注意：這一步驟對(duì)于清除內(nèi)切酶是必不可少的，以防止污染。7. 向吸附柱CG1 中加入700μl 漂洗液PW（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入無(wú)水乙醇），12,000 rpm (~13,400×g)離心 30 sec，倒掉廢液，將吸附柱CG1 放入收集管中。 8. 重復(fù)操作步驟 7。9. 將吸附柱CG1 放回收集管中，12,000 rpm(~13,400×g)離心 2 min，倒掉廢液。將吸附柱 CG1 置于室溫放置數(shù)分鐘，以徹底晾干吸附材料中殘余的漂洗液。注意：這一步的目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的殘留會(huì)影響后續(xù)的酶反應(yīng)（酶切、 PCR 等）實(shí)驗(yàn)。10. 將吸附柱 CG1 轉(zhuǎn)入一個(gè)干凈的離心管中，向吸附膜的中間部位懸空滴加 50-200μl 洗脫緩沖液TB，室溫放置 2-5 min，12,000 rpm (~13,400×g)離心 2 min，將溶液收集到離心管中。注意：洗脫液體積不應(yīng)少于 50μl，體積過(guò)小影響回收效率。洗脫液的 pH 值對(duì)于洗脫效率有很大影響。若用ddH2O 做洗脫液應(yīng)保證其 pH 值在 7.0-8.5 范圍內(nèi)，pH 值低于 7.0 會(huì)降低洗脫效率；DNA 產(chǎn)物應(yīng)保存在-20℃，以防 DNA 降解。為增加基因組 DNA 的得率，可將離心得到的溶液再加入吸附柱 CG1 中,室溫放置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g )離心 2 min。
血液/細(xì)胞/組織基因組DNA提取試劑盒
基本售價(jià)：273.00元
血液/細(xì)胞/組織基因組 DNA 純化試劑盒 產(chǎn)品組成 GF304-02 GF304-03 (50 preps) (200 preps) 溶液 GA (Buffer GA) 15 ml 60 ml 溶液 BG (Buffer BG) 30ml 120ml 蛋白酶 K (20mg/ml) 1.1ml 4*1.1ml 漂洗液 PW (Buffer PW) 16ml（使用前請(qǐng)先加入 64ml 無(wú)水乙醇） 64ml（使用前請(qǐng)先加入 256ml 無(wú)水乙醇） 洗脫緩沖液 TB (Buffer TB) 15 ml 60 ml 吸附柱 CG1 (Spin Columns CG1) 50 個(gè) 200 個(gè) 收集管(2 ml) (Collection Tubes 2ml) 50 個(gè) 200 個(gè) 選配試劑紅細(xì)胞裂解液（Red Cell Lysis Buffer 貨號(hào)：GF1201-01）;RNase A (100mg/ml) 貨號(hào)：GF0201-01) 儲(chǔ)存條件該試劑盒置于室溫（15-25℃）干燥條件下，可保存18個(gè)月，更長(zhǎng)時(shí)間的保存可置于2-8℃。2-8℃保 存條件下，若溶液產(chǎn)生沉淀，使用前應(yīng)將試劑盒內(nèi)的溶液在室溫放置一段時(shí)間，必要時(shí)可在37℃水浴中預(yù) 熱10 min，以溶解沉淀。 產(chǎn)品簡(jiǎn)介及特點(diǎn)本試劑盒采用可以特異性結(jié)合DNA 的離心吸附柱，和獨(dú)特的緩沖液系統(tǒng)，能高效、專(zhuān)一吸附DNA，可有 效去除雜質(zhì)蛋白及細(xì)胞中其他有機(jī)化合物,用來(lái)提取多種細(xì)胞中的基因組 DNA。不需要苯酚、氯仿等有機(jī)溶劑，安全方便；提取的基因組 DNA 片段大，純度高，質(zhì)量穩(wěn)定可靠。根據(jù)不同的樣本量和樣本類(lèi)型，可以提取的DNA 產(chǎn)量范圍為 1-40ug。 使用本試劑盒回收的 DNA 可適用于各種常規(guī)操作，包括酶切、PCR、文庫(kù)構(gòu)建、Southern 雜交等實(shí)驗(yàn)。 注意事項(xiàng) 1. 樣品應(yīng)避免反復(fù)凍融，否則會(huì)導(dǎo)致提取的DNA 片段較小且提取量也下降。2. 若溶液 GA 或溶液BG 中有沉淀，可在 37℃水浴中重新溶解，搖勻后使用。 3. 所有離心步驟均為使用臺(tái)式離心機(jī)，室溫下離心。操作步驟 使用前請(qǐng)先在漂洗液PW中加入無(wú)水乙醇，加入體積請(qǐng)參照瓶上的標(biāo)簽。1.處理材料a. 如提取材料為血液，可直接使用 200μl 新鮮、冷凍或加入各種抗凝劑的血液，不足 200 μl 可加溶液GA 補(bǔ)足；注意：如需處理更大體積血液，如 300μl-1 ml，應(yīng)按以下步驟操作：在樣品中加入 3 倍體積紅細(xì)胞裂解液 （例如，300μl 血液加入 900μl 紅細(xì)胞裂解液），顛倒混勻，室溫放置 5 min，期間再顛倒混勻幾次。10000 rpm(~11,500×g)離心 1 min（若離心機(jī)最高轉(zhuǎn)速不允許，可 3000 rpm(~3,400×g)離心5 min），吸去上清，留下白細(xì)胞沉淀，加 200 μl 溶液 GA，振蕩至徹底混勻。 紅細(xì)胞裂解液本公司另外有售（貨號(hào)：GF1201-01），可根據(jù)需要來(lái)決定購(gòu)買(mǎi)。 b. 如果處理血樣為禽類(lèi)、鳥(niǎo)類(lèi)、兩棲類(lèi)或更低級(jí)生物的抗凝血液，其紅細(xì)胞為有核細(xì)胞，因此處理量 5- 20μl，可加溶液 GA 補(bǔ)足 200 μl 后進(jìn)行下面的裂解步驟。c. 貼壁培養(yǎng)的細(xì)胞應(yīng)先處理為細(xì)胞懸液，然后 10,000 rpm(~11,200×g)離心 1 min，倒盡上清，加 200 μl 溶液GA，振蕩至徹底懸浮。d. 動(dòng)物組織（脾組織用量應(yīng)少 10 mg）應(yīng)先打碎處理為細(xì)胞懸液，然后 10,000rpm(~11,200×g)離心 1 min，倒盡上清，加 200 μl 緩沖液 GA，振蕩至徹底懸浮。注意：如果需要去除RNA，可加入 4 μl RNaseA（100 mg/ml）溶液（客戶自備，目錄號(hào)：GF0201-01）， 振蕩 15 sec，室溫放置 5 min。2. 加入 20μl Proteinase K 溶液，混勻。 a.提取血液基因組時(shí)，加入Proteinase K，混勻，即可繼續(xù)進(jìn)行下一步。 b.提取細(xì)胞基因組時(shí)，加入Proteinase K，混勻，即可繼續(xù)進(jìn)行下一步。 c.提取組織基因組時(shí)，加入 Proteinase K 混勻后，在 56℃放置，直至組織溶解，簡(jiǎn)短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠，再進(jìn)行下一步驟。注意：不同組織裂解時(shí)間不同，通常需 1-3 h 即可完成（鼠尾需要消化過(guò)夜），每小時(shí)顛倒混合樣品 2-3次，用水浴振蕩器也可。3. 加入 200ul 溶液 BG，充分顛倒混勻，70℃放置 10 min,溶液應(yīng)變清亮，簡(jiǎn)短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠。注意：加入溶液 BG 時(shí)可能會(huì)產(chǎn)生白色沉淀，一般 70℃放置時(shí)會(huì)消失,不會(huì)影響后續(xù)實(shí)驗(yàn)。如溶液未變清亮，說(shuō)明細(xì)胞裂解不徹底，可能導(dǎo)致提取 DNA 量少和提取出的DNA 不純。當(dāng)血液體積≤200μl 且沒(méi)有采用紅細(xì)胞裂解處理，或是樣本儲(chǔ)存條件不佳，水浴后顏色可能為深褐色，注意溶液中沒(méi)有團(tuán)塊等沉淀。4. 加入 200ul 無(wú)水乙醇，充分振蕩混勻 15sec，此時(shí)可能會(huì)出現(xiàn)絮狀沉淀，簡(jiǎn)短離心以去除管蓋內(nèi)壁的水珠。 5. 將上一步所得溶液和絮狀沉淀都加入一個(gè)吸附柱CG1 中（吸附柱放入收集管中），12,000 rpm (~13,400×g)離心 30 sec，倒掉廢液，將吸附柱CG1 放回收集管中。 6. 向吸附柱CG1 中加入 300μl 溶液BG，12,000rpm (~13,400×g)離心 30 sec，倒掉廢液，將吸附柱 CG1 放入收集管中。注意：這一步驟對(duì)于清除內(nèi)切酶是必不可少的，以防止污染。7. 向吸附柱CG1 中加入700μl 漂洗液PW（使用前請(qǐng)先檢查是否已加入無(wú)水乙醇），12,000 rpm (~13,400×g)離心 30 sec，倒掉廢液，將吸附柱CG1 放入收集管中。 8. 重復(fù)操作步驟 7。9. 將吸附柱CG1 放回收集管中，12,000 rpm(~13,400×g)離心 2 min，倒掉廢液。將吸附柱 CG1 置于室溫放置數(shù)分鐘，以徹底晾干吸附材料中殘余的漂洗液。注意：這一步的目的是將吸附柱中殘余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的殘留會(huì)影響后續(xù)的酶反應(yīng)（酶切、 PCR 等）實(shí)驗(yàn)。10. 將吸附柱 CG1 轉(zhuǎn)入一個(gè)干凈的離心管中，向吸附膜的中間部位懸空滴加 50-200μl 洗脫緩沖液TB，室溫放置 2-5 min，12,000 rpm (~13,400×g)離心 2 min，將溶液收集到離心管中。注意：洗脫液體積不應(yīng)少于 50μl，體積過(guò)小影響回收效率。洗脫液的 pH 值對(duì)于洗脫效率有很大影響。若用ddH2O 做洗脫液應(yīng)保證其 pH 值在 7.0-8.5 范圍內(nèi)，pH 值低于 7.0 會(huì)降低洗脫效率；DNA 產(chǎn)物應(yīng)保存在-20℃，以防 DNA 降解。為增加基因組 DNA 的得率，可將離心得到的溶液再加入吸附柱 CG1 中,室溫放置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g )離心 2 min。
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